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FluorPen手持式葉綠素熒光儀（分離葉夾）

FluorPen手持式葉綠素熒光儀（分離葉夾）采用調(diào)試式熒光測量技術(shù)，可設(shè)置多種參數(shù)，方便測量多種植物葉綠素熒光。外觀小巧，方便攜帶，設(shè)計新穎，操作簡單，經(jīng)濟耐用，精度高穩(wěn)定性好。自帶暗適應葉夾，容易操作。

應用領(lǐng)域

 適用于光合作用研究和教學，植物及分子生物學研究，農(nóng)業(yè)、林業(yè)，生物技術(shù)領(lǐng)域等。研究內(nèi)容涉及光合活性、脅迫響應、農(nóng)藥藥效測試、突變等。

• 植物光合特性和代謝紊亂篩選
• 生物和非生物脅迫的檢測
• 植物抗脅迫能力或者易感性研究
• 代謝混亂研究
• 長勢與產(chǎn)量評估
• 植物——微生物交互作用研究
• 植物——原生動物交互作用研究

典型樣品

• 植物葉片
• 其它

工作原理

利用調(diào)制式熒光測量技術(shù)，采用LED光源，選擇儀器內(nèi)置的給光方案測量并計算葉綠素熒光的各種參數(shù)。

功能特點：實驗過程和測量參數(shù)

• Ft：瞬時葉綠素熒光、暗適應完成后Ft＝Fo
• QY：光量子效率，表示光系統(tǒng)II 的效率，等于Fv/Fm(暗適應完成的樣品)或Fv’/Fm’ (光適應完成的樣品)
• OJIP：葉綠素熒光瞬時OJIP曲線是反應光合作用過程中植物生理時間過程的重要信號。
• NPQ：非光化學淬滅，表示光合作用中葉綠素吸收光能后以熱形式散失掉的部分。
• 光曲線：Qy對不同光強的適應曲線。
• PAR測量：可在熒光儀上顯示PAR值，可計算20次檢測值的平均。
• 另外還具有GPS定位功能

技術(shù)參數(shù)

• 測量參數(shù)：Fo, Ft, Fm, Fm´,QY， OJIP, NPQ 1,2 和光曲線1,2,3。
• 測量光：藍光（可選紅光或白光）
• 光化學光和飽和光：0–3000µmol (photons).m-2.s-1可調(diào)
• 波長檢測范圍：697nm-750nm
• BOIS：可升級
• 

通訊：USB接口

• 存儲：4M
• 數(shù)據(jù)存儲：100,000個
• 顯示：2 x 8字符黑白液晶屏
• 鍵盤：密封防水設(shè)計2鍵
• 自動關(guān)機：5分鐘無操作
• 電源：4 AAA堿性電池或充電電池
• 電池壽命：持續(xù)測量70 h
• 低電報警
• 尺寸：120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2"
• 重量：180 g, 6.5 oz
• 操作條件：溫度：0 ～ 55 ºC；相對濕度：0 ～ 95 %非冷凝
• 存儲條件：溫度：-10 to +60 ºC；相對濕度：0 ～ 95 %非冷凝
• 軟件：FluorPen2.0, Windows 2000,XP或更高*，實時顯示和遙控，植入GPS繪圖，EXCEL輸出
• PAR傳感器：讀數(shù)單位µmol(photons)/m².s，可顯示讀數(shù)，檢測范圍400-700 nm

操作軟件與實驗結(jié)果

配置型號指南：

標準配置——FP100max-D + GPS模塊 + PAR傳感器：功能完備

簡化配置——FP100max-D：無PAR數(shù)據(jù)+ 無GPS數(shù)據(jù)

產(chǎn)地: 歐洲

參考文獻

Harding S.A., Jarvie M.M., Lindroth R.L. and Tsai Ch-J. (2009): A comparative analysis of phenylpropanoid metabolism, N utilization, and carbon partitioning in fast- and slow-growing Populus hybrid clones. J. Exp. Botany, Vol. 60 (12), pp. 3443-3452.

Klem K. and Bajerova E. (2008): Adjustment of herbicide dose in sugar beet based on non-invasive chlorophyll fluorescence measurements. AgEng 2008 Conference, Hersonissos, Crete.

附：參數(shù)列表

Bckg = background

Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)