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PSI-FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)
  • PSI-FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)
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FKM多功能熒光動(dòng)態(tài)顯微觀測(cè)系統(tǒng)被設(shè)計(jì)成實(shí)驗(yàn)室研究的*設(shè)備,具備*的功能,是科研工作者夢(mèng)寐以求的科研利器。除了具備標(biāo)準(zhǔn)顯微葉綠素?zé)晒獬上竦墓δ芡?,F(xiàn)KM允許用戶(hù)進(jìn)行任意熒光激發(fā)和熒光釋放波段的測(cè)量,可對(duì)測(cè)量目標(biāo)進(jìn)行超高光譜分辨率和超快(?s)采樣頻率的熒光動(dòng)力學(xué)和吸光動(dòng)力學(xué)研究,能夠通過(guò)光譜分析區(qū)分各發(fā)色團(tuán)并進(jìn)行深入分析。

FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)


FKMFluorescence Kinetic Microscope)多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)是目前功能zui為強(qiáng)大全面的植物顯微熒光研究?jī)x器。它由包含可擴(kuò)展部件的增強(qiáng)顯微鏡、高分辨率CCD相機(jī)、激發(fā)光源組、光譜儀、控溫模塊以及相應(yīng)的控制單元和的工作站與分析軟件組成。它不僅可以進(jìn)行微藻、單個(gè)細(xì)胞、單個(gè)葉綠甚至基粒-基質(zhì)類(lèi)囊體片段進(jìn)行Fv/Fm、Kautsky誘導(dǎo)效應(yīng)、熒光淬滅、OJIP快速熒光響應(yīng)曲線(xiàn)、QA再氧化等各種熒光成像動(dòng)力學(xué)分析;還能通過(guò)激發(fā)光源組進(jìn)行進(jìn)行任意熒光激發(fā)和熒光釋放波段的測(cè)量,從而進(jìn)行GFPDAPI等熒光蛋白、熒光素以及藻青蛋白、藻紅蛋白、藻膽素等藻類(lèi)*熒光色素的成像分析;更可以利用光譜儀對(duì)各種熒光進(jìn)行光譜分析,區(qū)分各發(fā)色團(tuán)(例如,PSIPSII及各種捕光色素復(fù)合體等)并進(jìn)行深入分析。

FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)使熒光成像技術(shù)真正成為光合作用機(jī)理研究的探針,使科研工作者在細(xì)胞和亞細(xì)胞層次深入理解光合作用過(guò)程及該過(guò)程中發(fā)生的各種變化,為直接研究葉綠體中光合系統(tǒng)的工作機(jī)理提供了zui為有力的工具。


功能特點(diǎn)

·內(nèi)置現(xiàn)今葉綠素?zé)晒庋芯康娜砍绦颍?/span>Fv/Fm、Kautsky誘導(dǎo)效應(yīng)、熒光淬滅、OJIP快速熒光響應(yīng)曲線(xiàn)、QA再氧化等,可獲得70余項(xiàng)參數(shù)。

·配備20倍和40倍生物熒光物鏡,可以清晰觀測(cè)到葉綠體及其發(fā)出的熒光。

·激發(fā)光源組中包括紅光、藍(lán)光、綠光、白光、紫外光和遠(yuǎn)紅光等,通過(guò)紅藍(lán)綠三色光還可以調(diào)出可見(jiàn)光譜中的任何一種色光,能夠研究植物體中任何一種色素分子或發(fā)色團(tuán)。

·高靈敏度CCD鏡頭,時(shí)間分辨率zui高達(dá)50張每秒,可快速捕捉葉綠素?zé)晒馑沧儭?/span>

·高分辨率光譜儀能夠深入解析各種熒光的光譜圖。

·控溫系統(tǒng)可以保證實(shí)驗(yàn)樣品在同等溫度條件下進(jìn)行測(cè)量,提高實(shí)驗(yàn)精度,也可以進(jìn)行高溫/低溫脅迫研究。


應(yīng)用領(lǐng)域

·顯微結(jié)構(gòu)的植物光合生理研究

·植物逆境研究

·生物和非生物脅迫的研究

·植物抗脅迫能力及易感性研究

·突變體篩選及光合機(jī)理研究

·藻類(lèi)長(zhǎng)勢(shì)與產(chǎn)量評(píng)估

·藻類(lèi)*色素與光合作用關(guān)系

·植物——微生物交互作用研究

·植物——原生動(dòng)物交互作用研究

·基因工程與分子生物學(xué)研究

 測(cè)量樣品

·植物活體切片

·植物表皮

·植物細(xì)胞

·綠藻、藍(lán)藻等各種單細(xì)胞和多細(xì)胞微藻

·葉綠體提取液

·類(lèi)囊體提取液

·含有葉綠體的原生動(dòng)物

 工作原理

FKM分析過(guò)程中,通過(guò)連接在顯微鏡上的激發(fā)光源組和內(nèi)置在6位濾波輪中的一系列濾波器、分光鏡激發(fā)植物樣品中各種發(fā)色團(tuán)的動(dòng)態(tài)熒光。樣品激發(fā)出的熒光經(jīng)顯微鏡放大后進(jìn)行熒光光譜分析和熒光動(dòng)力學(xué)成像分析。SM 9000光譜儀通過(guò)光纖與顯微鏡連接,以進(jìn)行激發(fā)熒光光譜分析。安裝在顯微鏡頂部的高分辨率CCD相機(jī)則用于熒光動(dòng)力學(xué)成像分析。全部工作過(guò)程通過(guò)工作站和控制單元按照預(yù)先設(shè)定好的程序自動(dòng)進(jìn)行。測(cè)量過(guò)程中,可通過(guò)溫控模塊調(diào)控藻類(lèi)、植物細(xì)胞等實(shí)驗(yàn)樣品的溫度。蠕動(dòng)泵可以實(shí)現(xiàn)培養(yǎng)藻類(lèi)的連續(xù)測(cè)量。


儀器組成

1.增強(qiáng)顯微鏡

2.高分辨率CCD相機(jī)

3.激發(fā)光源組

4.SM 9000光譜儀

5.主控制單元

6.工作站及軟件

7.控溫模塊的控制單元

8.6位濾波輪

 技術(shù)參數(shù)

·測(cè)量參數(shù)

úF0F0,FsFm,Fm’Fp,FtDn,FtLnFv,NPQ_DnNPQ_Ln,Qp_Dn,Qp_Ln,qN,QYQY_Ln,Rfd等五十多項(xiàng)參數(shù)

úOJIP快速熒光曲線(xiàn):F0F300、Fj、Fi、Fm、Vj、Vi、Fv / FmM0、SM、SS、NPhi_P0、Psi_0Phi_E0、Phi_D0、Pi_Abs、ABS / RC、TR0/ RC、ET0/ RC、DI0/ RC

úQA再氧化曲線(xiàn)(選配)

ú熒光光譜圖

·測(cè)量光:紅光、藍(lán)光、綠光、白光、紫外光

·光化光:紅光、藍(lán)光、綠光、白光、紫外光,光強(qiáng)為6000-20000μmol(photons)/m2.s(與光質(zhì)和放大倍數(shù)有關(guān))

·飽和光:紅光、藍(lán)光、綠光、白光、紫外光,光強(qiáng)為13000-80000μmol(photons)/m2.s(與光質(zhì)和放大倍數(shù)有關(guān))

·透射光:白光、遠(yuǎn)紅光

  • 高分辨率CCD:像素可調(diào),zui高達(dá)1392×1040像素,時(shí)間分辨率zui高達(dá)每秒50

  • 顯微鏡:Axio Imager M2


·物鏡:20倍和40倍生物熒光物鏡

·6位濾波輪:葉綠素?zé)晒狻?/span>GFP/SYTOX、DAPI/CTC

·SM9000光譜儀

ú入射狹縫:70μm×1400μm

ú光柵:平場(chǎng)型校正

ú光譜范圍:200-980nm

ú波長(zhǎng)精確度:<0.5nm

ú再現(xiàn)性:<0.1nm

ú溫度漂移:<0.01nm/K

·溫度調(diào)控模塊:溫度調(diào)節(jié)范圍5-70,精確度0.1

·蠕動(dòng)泵(選配):流速10-5600μl/min,用于藻類(lèi)連續(xù)培養(yǎng)測(cè)量

  • FluorCam葉綠素?zé)晒獬上穹治鲕浖?,?/span>Live(實(shí)況測(cè)試)、Protocol(實(shí)驗(yàn)程序選擇)、Pre–processing(成像預(yù)處理)、Result(成像分析結(jié)果)等菜單

  • Protocol實(shí)驗(yàn)程序可自由編輯,用戶(hù)也可利用Protocol菜單中的向?qū)С绦蚰0孀杂蓜?chuàng)建新的實(shí)驗(yàn)程序

  • 成像預(yù)處理可以自動(dòng)選區(qū)或手動(dòng)選擇不同形狀、不同數(shù)量、不同位置的區(qū)域(Region of interestROI),成像分析結(jié)果包括高時(shí)間解析度熒光動(dòng)態(tài)圖、直方圖、不同參數(shù)成像圖、不同ROI的熒光參數(shù)列表等

  • 數(shù)據(jù)分析具備“信號(hào)計(jì)算再平均"模式(算數(shù)平均值)和“信號(hào)平均再計(jì)算模式",在高信噪比的情況下選用“信號(hào)計(jì)算再平均"模式,在低信噪比的情況下選擇“信號(hào)平均再計(jì)算"模式以過(guò)濾掉噪音帶來(lái)的誤差

 葉綠素?zé)晒馀c光譜分析結(jié)果



典型應(yīng)用:
1. CLAIRE M. M. GACHON etc. Single-cell chlorophyll fluorescence kinetic microscopy of Pylaiella littoralis (Phaeophyceae) infected by Chytridium polysiphoniae (Chytridiomycota). Eur. J. Phycol., (2006), 41(4): 395–403

2. Hendrik Kupper etc. Reversible coupling of individual phycobiliprotein isoforms during state transitions in the cyanobacterium Trichodesmium analysed by single-cell fluorescence kinetic measurements. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics, Volume 1787, Issue 3, March 2009, Pages 155-167

Fig. 1. 吸收光譜與熒光發(fā)射光譜:異構(gòu)藻青蛋白(APC);藻青蛋白(PC);藻紅蛋白(PE1、PE2、PE3);藻尿后膽色素(PUB’s)

Fig.2.各種色素蛋白對(duì)F0的貢獻(xiàn)、光譜及其隨時(shí)間的變化:異構(gòu)藻青蛋白(APC);藻青蛋白(PC);藻紅蛋白(PE1、PE2、PE3);藻尿后膽色素(PUB’s)


參考文獻(xiàn):

1.     Ferimazova.et al. (2013): Photosynth Res.: DOI 10.1007/s11120-013-9897-z.

2.     AndresenE. et al. (2009): New Phytologist.

3.     Mijovilovich A. etal. (2009): Plant Physiol. DOI:10.1104/pp.109.144675.

4.     KuepperH. et al. (2009): Plant Physiol.DOI:10.1104/pp.109.139717.

5.     Kuepper H. et al.(2009): BBA 1787: 155-167.

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7.     KuepperH. et al. (2008): New Phytologist 179: 784-798.

8.     KuepperH. et al. (2007): New Phytologist 175: 655-674.

9.     GachonC.M.M. et al. (2006): Eur. J. Phycol. 41: 395-403.

10. SetlikovaE. et al. (2005): Photosynth. Res. 84: 113-120.

11.  Kuepper H. et al. (2004): Plant Physiol. 135: 2120-2133.

12. Ferimazova et al. (2002): Photochem. Photobiol. 76:501-508.

13.  Berman-Frank I. et al. (2001): Science 294: 1534-1537.

14. KuepperH. et al. (2000): Photosynthetica 38: 553/570.


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