1. 去除色譜柱內(nèi)的緩沖液，鹽，酸的方法：使用不含緩沖液，鹽，酸的流動(dòng)相沖洗10-15分鐘。
   例：流動(dòng)相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時(shí)，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法，基線(xiàn)不穩(wěn)時(shí)的解決方法

• 樣本不是蛋白質(zhì)時(shí)，使用甲醇或四氫呋喃沖洗。

• 樣品是蛋白質(zhì)時(shí)，使用含0.1% C2HF3O2的50-70%的乙腈/水沖洗

1. 短期（數(shù)日）保存：
   使用不含緩沖液，鹽，酸的流動(dòng)相沖洗10-15分鐘。保存。
   例：流動(dòng)相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時(shí)，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 長(zhǎng)期（1個(gè)月以上）保存：
   使用后，先用不含酸和鹽的流動(dòng)相清洗色譜柱，再將流動(dòng)相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30，保存。

除堿溶液和強(qiáng)酸溶液（pH1.5以下）以外都可以使用。（強(qiáng)堿溶液會(huì)使硅膠溶化，強(qiáng)酸溶液會(huì)使固定相脫落）
注意點(diǎn)：
溶劑粘度過(guò)高會(huì)導(dǎo)致壓力上升，請(qǐng)將壓力控制在20Mpa以下。使用酸性流動(dòng)相或凝固點(diǎn)高的溶劑后，必須清洗色譜柱。

• 一般情況下緩沖液濃度為0.005~0.02 mol/L即可。

• 流動(dòng)相在使用前一定要通過(guò)0.5μm以下的濾膜過(guò)濾。

• 蛋白質(zhì)反相模式分析時(shí)，請(qǐng)使用大孔徑色譜柱（孔隙直徑300?) COSMOSIL Protein - R（粒徑5μm）。