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超濾離心管怎么使用?

閱讀:860        發(fā)布時(shí)間:2021-8-4

超濾離心管怎么使用?


【求助】millipore超濾離心管想重復(fù)使用,請(qǐng)問如何清洗和保存?

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【回答精要】最近使用超濾管,由于管子較貴,想重復(fù)用幾次,但找不到可靠的資料。不知如何清洗和保存,比如有人說用die氮化鈉,有人說用氫氧化鈉,有人說用乙醇浸泡。莫衷一是。很急用。
使用后用0.1M NaOH泡24h,然后20%乙醇浸泡保存。


這個(gè)我是聽老板們說的,的確乙醇泡完后孔徑會(huì)增大,基本就是5-10KD最大,也就是說如果你的蛋白在21KD以上,應(yīng)該沒問題?;蛘呖梢圆挥靡掖寂荩肗aOH洗之后直接用無菌水保存,每周換一下液體,應(yīng)該沒有問題。


看看說明書不就結(jié)了!我原來在CRO的時(shí)候一直是重復(fù)用的,也沒見什么不好?。《唐跁?huì)用的話,用20%的乙醇泡著,回頭拼命用millipore的水充干凈,然后在用樣品緩沖液平衡一下就好,至于有些人說的改變孔徑,也沒那么大影響的,你至少跟目的蛋白分子量差別3倍的截留分子量才安全的不是嗎?1個(gè)月以內(nèi)不用的話,建議用100mM的NaOH保存!更長時(shí)間的話加0.02%的疊氮鈉,但那個(gè)東西強(qiáng)致癌物,不建議使用。


理論上截留目標(biāo)物,孔徑應(yīng)選1/3~1/5的膜;透過目標(biāo)物,孔徑應(yīng)選5-10倍的膜。



【求助】準(zhǔn)備用millipore 的超濾離心管從細(xì)胞培養(yǎng)上清液中濃縮蛋白,在園子里找到一些關(guān)于濃縮蛋白的一些帖子,但還有些問題還是向園子里的大蝦請(qǐng)教一下。我們定的是Amicon Ultra 15ml規(guī)格的管子,不知道有沒有誰以前做過的,有關(guān)于轉(zhuǎn)速,時(shí)間給一些建議,另外細(xì)胞上清液離心前是否需要什么預(yù)處理?離心之后回收蛋白時(shí)怎么盡量減少損失?如果要把管子重復(fù)利用,NaoH清洗后,如何在20%的乙醇中保存?是將其浸到乙醇中防于4度,還是在管子中灌入乙醇?


【回答精要】



我用過5ml的管子,當(dāng)時(shí)使用的轉(zhuǎn)速是4000rpm 8min,可以把5ml的樣品液濃縮到約200ul,這僅供參考,具體情況還要由您的樣品決定。


我保存5ml管子的方法是把內(nèi)管取出,浸泡于裝有20%乙醇的燒杯中。四度保存。


該種管子可以脫鹽濃縮但不宜根據(jù)截留半徑做分離蛋白用。


我用的是3500g,4度離心,時(shí)間可以自己控制,取決于你最終的濃縮體積,我一般是200ul左右。


千萬別一下離心時(shí)間太長,不同的蛋白濃縮的速度不同,有的需要長時(shí)間離心,有的則一下子就好。當(dāng)然也和你的蛋白是否比較純,所用的是什么buffer,還有蛋白的濃度有關(guān)系。所以離心時(shí)要先短些時(shí)間觀察一下你的濃縮速度,不要一下子濃縮過了,甚至形成沉淀就得不償失了。


另外其實(shí)他們的管子都設(shè)計(jì)的是一次性使用,所以如果想重復(fù)使用,不要離得速度太高,4000-4500RPM就差不多了,另外重復(fù)使用時(shí)要看看管壁上有沒有裂紋,現(xiàn)在的管子好像不如從前的結(jié)實(shí)了。


用后把管子用純水洗干凈,離心少時(shí),洗一下膜,再象propeg主任說的那樣收起來即可。使用多次后若覺得有些堵,就可以用NaOH泡泡,離心幾分鐘,應(yīng)該會(huì)有改善。



純化多肽,截?cái)喾肿恿靠梢赃x10倍,純化球蛋白,截?cái)喾肿恿靠梢赃x3倍,如管子要重復(fù)使用,轉(zhuǎn)速設(shè)最大轉(zhuǎn)速(G)的80%左右,不然時(shí)間長了塑料就裂了,膜也容易出問題。


離心后管子用MilliQ水清洗干凈,浸泡在水中,4度保存就行了,不放心就放點(diǎn)防腐劑,但是這個(gè)管今后只能用來離心同類的樣品哦。


超濾損失蛋白是正常的,樣品體積大就分批離心,別搞的離心時(shí)間太長,樣品里的雜質(zhì)如果可能盡量在離心前去除一些。超濾離心管怎么使用?




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