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安捷倫科技(中國)有限公司

【技術(shù)方案】微孔板內(nèi)細(xì)胞固定和抗體染色自動化解決方案

時(shí)間:2024-1-19 閱讀:459
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以往,我們使用顯微鏡做熒光成像的時(shí)候,常常將樣本放在載玻片上。但是隨著樣本量增加,細(xì)胞實(shí)驗(yàn)使用 96 孔和 384 孔微孔板逐漸成為趨勢,這與高內(nèi)涵(high-content analysis,HCA)分析不謀而合。

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高內(nèi)涵分析是一種高通量識別并分析由與細(xì)胞相互作用的物質(zhì)所帶來的細(xì)胞表型變化的方法。這些物質(zhì)包括小分子、受體配體和 RNAi,它們可能引起——增加或減少特定蛋白質(zhì)產(chǎn)生的表型變化、G 蛋白偶聯(lián)受體(GPCR)的內(nèi)化、核激素受體易位、細(xì)胞凋亡、蛋白質(zhì)翻譯后修飾的變化以及細(xì)胞形態(tài)的變化。雖然通過明場成像(透射光)可以觀察一些細(xì)胞形態(tài)變化,但更多的形態(tài)學(xué)變化需要使用更有針對性的染色方案,比如抗體或者小分子熒光探針。

 

 

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BioTek Cytation C10 共聚焦微孔板成像檢測系統(tǒng)支持高內(nèi)涵成像與分析

 

 

無論使用何種抗體和熒光染料的組合,對于低背景的特異性染色,都需要一系列的試劑添加和清洗步驟來去除未結(jié)合的抗體或染料。

 

安捷倫 BioTek 406 FX 洗板分液系統(tǒng)是一個(gè)模塊化的系統(tǒng),具備分液和細(xì)胞清洗雙重功能。406 FX 可以通過觸控屏或者使用電腦上 LHC 軟件進(jìn)行控制和編程:

  • 快速清洗 96/384 孔板,且無需更換洗頭;

  • 最多 4 個(gè)注射器泵和 2 個(gè)蠕動泵分液器的組合允許同時(shí)添加 6 種試劑;

  • 蠕動泵結(jié)合 1μL 卡夾,允許用戶最大限度的減少試劑制備量;

  • 管路內(nèi)的試劑可回收;

  • 注射器泵支持快速批量分液。

 

 

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406 FX 洗板分液系統(tǒng)

 

 

一臺 406 FX 即可完成 96/384 孔板中制備細(xì)胞樣品所需的試劑添加和清洗步驟。成角度分液頭的獨(dú)特設(shè)計(jì),有效保護(hù)單層細(xì)胞不受加液和清洗影響。

 

下面我們就一起了解下 406 FX 細(xì)胞分液系統(tǒng)在如何代替手工,完成在微孔板中固定和染色細(xì)胞的工作流程。

 

 

 

實(shí)驗(yàn)方法

 

 

1

細(xì)胞培養(yǎng)與接種

 

將 HT-1080 細(xì)胞和 NIH3T3 細(xì)胞通過 406 FX 的蠕動泵 5μL卡夾分別接種到 96 孔板(黑色,透明底,貨號:204626-100,安捷倫)中,再使用第二蠕動泵添加不含細(xì)胞的完整培養(yǎng)基,使得每個(gè)孔體積均為 200μL。

 

 

2

細(xì)胞固定、透化與熒光染色

 

所有固定、透化和熒光染色所需要的試劑添加和細(xì)胞清洗步驟均由 406 FX 來完成(圖 1)。其中,對于昂貴的一抗和二抗,使用蠕動泵來添加,管路中的試劑可回收。

用于透化細(xì)胞的固定劑和細(xì)胞洗液則使用注射器泵添加。實(shí)驗(yàn)所涉及的試劑、抗體和染料和詳細(xì)實(shí)驗(yàn)步驟請查看原文。

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圖 1. 固定和染色工作流程

 

 

 

3

細(xì)胞成像分析

 

使用安捷倫 BioTek Cytation C10 共聚焦微孔板成像系統(tǒng)對細(xì)胞進(jìn)行成像和分析。Cytation C10 將共聚焦光路與寬場顯微成像相結(jié)合,對于寬場成像,Cytation C10 將 LED 光源與高性能濾光片 cube 直接耦合,提供多色熒光成像,在本次實(shí)驗(yàn)中使用 DAPI、GFP、TRITC 和 CY5 四個(gè)熒光通道。對于共聚焦,Cytation C10 使用激光器結(jié)合轉(zhuǎn)盤共聚焦的方式為有厚度的樣本提供更優(yōu)異的分辨率和光學(xué)層切能力。

 

 

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圖 2. HT-1080 細(xì)胞固定染色

 

使用 Agilent BioTek 406 FX 洗滌分配器進(jìn)行液體處理,固定 HT-1080 細(xì)胞并對肌動蛋白(紅色)、微管蛋白(綠色)、細(xì)胞核(藍(lán)色)和線粒體(橙色)進(jìn)行染色。使用 Agilent BioTek Cytation C10 共聚焦微孔板成像檢測系統(tǒng)用 40 倍物鏡拼接成像(2×2)。

 

 

 

結(jié)果與討論

 

 

 

1

可變細(xì)胞數(shù)接種準(zhǔn)確性驗(yàn)證

 

通過接種不同體積的細(xì)胞懸液,可以改變孔中的細(xì)胞數(shù)量。本實(shí)驗(yàn)中,使用 406 FX 初級蠕動泵將相同細(xì)胞濃度的 NIH 3T3 細(xì)胞以不同體積接種至 96 孔板中,然后使用二級蠕動泵向孔內(nèi)添加培養(yǎng)基,至每孔體積均為 200μL,固定細(xì)胞并使用 Hoechst 33342 染色后通過成像進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù),計(jì)數(shù)結(jié)果與接種細(xì)胞時(shí)基于細(xì)胞濃度預(yù)期的細(xì)胞數(shù)量具有良好的相關(guān)性(圖 3)。

 

 

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圖 3. 可變細(xì)胞數(shù)接種

 

2

編程的靈活性驗(yàn)證

 

406 FX 可以根據(jù)不同的實(shí)驗(yàn)需求,在 2 個(gè)蠕動泵和 4 個(gè)注射器泵中靈活選擇進(jìn)行程序設(shè)置,比如實(shí)現(xiàn)一個(gè)簡化版的固定和染色步驟。如圖 4 中的 NIH3T3 細(xì)胞表達(dá) GFP,僅使用 DAPI 和 Texas Red 鬼筆環(huán)肽進(jìn)行復(fù)染,其固定和染色過程僅使用了洗板模塊,一個(gè)蠕動泵和兩個(gè)注射器泵。

 

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圖 4. 406 FX 固定和染色后的三色熒光成像圖。表達(dá) GFP 的 NIH 3T3 細(xì)胞用 exas Red phalloidin(actin)染色,用 DAPI 染核。10 倍物鏡拍攝。

 

3

蠕動泵獨(dú)立分液,降本增效

 

406 FX 蠕動泵的卡夾采用 8 通道設(shè)計(jì),8個(gè)通道既可以分裝相同的試劑,又可以分裝不同的試劑。8個(gè)通道獨(dú)立使用,在用來篩選熒光染料時(shí)可以節(jié)約染料和細(xì)胞,非常方便。圖 5 展示的是使用蠕動泵將不同的熒光染料組合加入到 4 個(gè)細(xì)胞孔里染色后的細(xì)胞圖像。

 

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圖 5. 不同熒光標(biāo)記的 phalloidin 復(fù)染結(jié)果

使用 406 FX 固定 HT-1080,再通過蠕動泵加入不同的染料組合,(A) Hoechst 33342 only;(B) Hoechst 33342 and AlexaFluor 488 phalloidin;(C) Hoechst 33342 and AlexaFluor 555 phalloidin;(D) Hoechst 33342 and CF633 phalloidin

 

該方法也同樣適用于檢測抗體特異性,檢測不同抗體的特異性時(shí)通常需要使用抗體陰性對照。如圖 6 所示,通過 406 FX 的一級和二級蠕動泵將6種不同的抗體混合物分別加入兩列細(xì)胞孔中,產(chǎn)生陰性對照:缺乏 rabbit anti-Tom20 一抗和對應(yīng)二抗的孔不顯示紅色熒光,同樣,缺乏 mouse anti-tubulin 和對應(yīng)二抗的孔不顯示綠色熒光。

 

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圖 6. 抗體特異性驗(yàn)證

圖 6A 和圖 6F 為一抗和二抗完全混合,而圖 6B 到圖 6E 各缺少一種抗體。使用 20 倍物鏡,DAPI、GFP、TRITC和CY5通道成像。

 

 

結(jié)論

 

 

 

高內(nèi)涵分析目前在藥物發(fā)現(xiàn)過程中發(fā)揮著重要作用。基于顯微圖像的分析歷來需要大量的手工樣品處理,費(fèi)時(shí)費(fèi)力,并且容易產(chǎn)生可能導(dǎo)致偽影的錯誤處理。在這些繁瑣、重復(fù)的步驟中使用自動化液體處理設(shè)備,不僅提高了效率、減少了技術(shù)人員偏差,同時(shí)也讓研究人員得以將時(shí)間用在更重要的工作上。

 

406 FX 體積小巧,可以放入生物安全柜使用,進(jìn)行無菌操作,也可以與自動化設(shè)備整合,進(jìn)行自動化程度更高的樣本制備流程。

 

 

 

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Agilent BenchCel 微孔板處理器與 Agilent BioTek 406 FX 洗板分液系統(tǒng)和 Cytation 細(xì)胞成像多功能微孔板檢測系統(tǒng)集成

 

 

 

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請掃碼下載本解決方案,了解更多細(xì)節(jié)。

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【技術(shù)方案】微孔板內(nèi)細(xì)胞固定和抗體染色自動化解決方案

 

 

 

 

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