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首頁 >> 技術(shù)文章 >> 懸浮細胞的siRNA轉(zhuǎn)染步驟
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懸浮細胞系:根據(jù)研究目的選擇合適的懸浮細胞系,如血液細胞系(如淋巴細胞、白血病細胞等)、腫瘤細胞系(如淋巴瘤細胞、骨髓瘤細胞等)。確保細胞處于良好的生長狀態(tài),無微生物污染。
siRNA:針對目標(biāo)基因設(shè)計合成的 siRNA,其序列應(yīng)經(jīng)過嚴(yán)格的篩選和驗證,以確保具有高效的基因沉默效果。同時,需準(zhǔn)備陰性對照 siRNA,用于排除非特異性轉(zhuǎn)染效應(yīng)。
轉(zhuǎn)染試劑:選擇適用于懸浮細胞的轉(zhuǎn)染試劑,常見的有脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑、陽離子聚合物轉(zhuǎn)染試劑等。不同的轉(zhuǎn)染試劑具有不同的轉(zhuǎn)染效率和細胞毒性,需根據(jù)細胞類型和實驗要求進行選擇。
細胞培養(yǎng)基:適合所選懸浮細胞生長的培養(yǎng)基,通常包含必需的營養(yǎng)成分、生長因子和血清等。培養(yǎng)基應(yīng)在無菌條件下配制和保存。
無菌 PBS(磷酸鹽緩沖液):用于洗滌細胞,保持細胞的滲透壓和 pH 穩(wěn)定。
細胞培養(yǎng)耗材:如培養(yǎng)瓶、離心管、移液器吸頭、培養(yǎng)板等,均需經(jīng)過高壓滅菌處理,確保無菌。
細胞培養(yǎng)箱:提供適宜的溫度(通常為 37°C)、濕度(通常為 95%)和二氧化碳濃度(通常為 5%),以維持細胞的正常生長和代謝。
離心機:用于細胞的離心收集和洗滌,轉(zhuǎn)速和離心時間需根據(jù)細胞類型和實驗要求進行調(diào)整。
倒置顯微鏡:用于觀察細胞的形態(tài)和生長狀態(tài),在轉(zhuǎn)染過程中可實時監(jiān)測細胞的健康狀況。
移液器:包括不同量程的單道移液器和多道移液器,用于準(zhǔn)確量取細胞懸液、培養(yǎng)基和轉(zhuǎn)染試劑等。
無菌操作臺:提供無菌操作環(huán)境,防止微生物污染實驗樣品。
熒光顯微鏡(可選):如果使用帶有熒光標(biāo)記的 siRNA 或轉(zhuǎn)染試劑,可通過熒光顯微鏡觀察轉(zhuǎn)染效率和細胞內(nèi) siRNA 的分布情況。
在無菌條件下,將懸浮細胞接種于合適的培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)板中,加入適量的細胞培養(yǎng)基,輕輕搖勻,使細胞均勻分布。
將細胞培養(yǎng)物置于細胞培養(yǎng)箱中,在適宜的條件下培養(yǎng),定期觀察細胞的生長狀態(tài),確保細胞處于對數(shù)生長期。
在轉(zhuǎn)染前,使用血細胞計數(shù)板或自動細胞計數(shù)儀對細胞進行計數(shù),根據(jù)實驗要求調(diào)整細胞濃度至合適的范圍(通常為 [X] - [X] cells/mL)。
siRNA 稀釋:根據(jù)實驗設(shè)計,將所需量的 siRNA 干粉溶解于適量的無 RNA 酶的 ddH?O 或?qū)S玫?siRNA 稀釋緩沖液中,輕輕混勻,制備成一定濃度的 siRNA 儲存液(通常為 20 μM)。然后,將 siRNA 儲存液進一步稀釋至工作濃度(通常為 50 - 200 nM),可根據(jù)轉(zhuǎn)染試劑的說明書和細胞類型進行優(yōu)化。
轉(zhuǎn)染試劑稀釋:按照轉(zhuǎn)染試劑說明書的要求,將轉(zhuǎn)染試劑用無血清的細胞培養(yǎng)基稀釋至適當(dāng)?shù)臐舛?。一般情況下,轉(zhuǎn)染試劑與 siRNA 的比例需通過預(yù)實驗進行優(yōu)化,以達到最佳的轉(zhuǎn)染效率和最小的細胞毒性。
在無菌離心管中,將適量稀釋后的 siRNA 溶液與等體積或相應(yīng)比例的稀釋后的轉(zhuǎn)染試劑溶液輕輕混合,避免劇烈振蕩,以免破壞復(fù)合物的形成。
將混合液在室溫下孵育一定時間(通常為 15 - 30 分鐘),使 siRNA 與轉(zhuǎn)染試劑充分結(jié)合,形成穩(wěn)定的 siRNA - 轉(zhuǎn)染試劑復(fù)合物。
將培養(yǎng)中的懸浮細胞輕輕搖勻,吸取適量的細胞懸液(根據(jù)實驗要求和細胞密度確定)轉(zhuǎn)移至新的無菌離心管中。
將預(yù)先制備好的 siRNA - 轉(zhuǎn)染試劑復(fù)合物緩慢滴加到含有細胞懸液的離心管中,邊滴加邊輕輕搖勻,使復(fù)合物均勻分布于細胞懸液中。
將轉(zhuǎn)染后的細胞懸液轉(zhuǎn)移回培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)板中,輕輕搖勻,然后將培養(yǎng)物置于細胞培養(yǎng)箱中,在適宜的條件下繼續(xù)培養(yǎng)。
轉(zhuǎn)染后培養(yǎng):根據(jù)細胞類型和實驗?zāi)康?,確定轉(zhuǎn)染后的培養(yǎng)時間。在培養(yǎng)過程中,定期觀察細胞的生長狀態(tài)和形態(tài)變化,如有必要,可更換新鮮的細胞培養(yǎng)基,以維持細胞的正常生長和代謝。
轉(zhuǎn)染效果檢測:在轉(zhuǎn)染后的適當(dāng)時間點,可通過多種方法檢測 siRNA 的轉(zhuǎn)染效果和目標(biāo)基因的沉默效率。
熒光檢測(如果使用熒光標(biāo)記的 siRNA 或轉(zhuǎn)染試劑):使用熒光顯微鏡觀察細胞內(nèi)的熒光信號,評估轉(zhuǎn)染效率。通過計算發(fā)出熒光的細胞數(shù)占總細胞數(shù)的比例,可得到大致的轉(zhuǎn)染效率。
qRT - PCR 檢測:提取轉(zhuǎn)染后細胞的總 RNA,反轉(zhuǎn)錄為 cDNA,然后利用實時熒光定量 PCR 技術(shù)檢測目標(biāo)基因的 mRNA 表達水平。與未轉(zhuǎn)染或陰性對照轉(zhuǎn)染的細胞相比,目標(biāo)基因 mRNA 表達水平顯著降低表明 siRNA 成功沉默了目標(biāo)基因。
Western blot 檢測:收集轉(zhuǎn)染后細胞的蛋白質(zhì),通過 Western blot 技術(shù)檢測目標(biāo)蛋白的表達水平。目標(biāo)蛋白表達量的減少可進一步證實 siRNA 對目標(biāo)基因的沉默效果。
細胞質(zhì)量控制:確保使用的懸浮細胞處于良好的生長狀態(tài),無微生物污染和其他異常情況。定期對細胞進行傳代培養(yǎng),避免細胞老化對轉(zhuǎn)染效率和實驗結(jié)果的影響。
實驗操作規(guī)范:在整個轉(zhuǎn)染過程中,嚴(yán)格遵守?zé)o菌操作原則,防止微生物污染。使用無 RNA 酶的耗材和試劑,避免 RNA 降解。操作過程中盡量減少對細胞的機械損傷,保持細胞的完整性。
轉(zhuǎn)染試劑選擇與優(yōu)化:不同的懸浮細胞系對轉(zhuǎn)染試劑的敏感性和適用性不同。在選擇轉(zhuǎn)染試劑時,需參考其說明書和相關(guān)文獻,了解其對特定細胞類型的轉(zhuǎn)染效率和細胞毒性。同時,通過預(yù)實驗優(yōu)化轉(zhuǎn)染試劑與 siRNA 的比例、轉(zhuǎn)染時間和細胞密度等參數(shù),以提高轉(zhuǎn)染效率并降低細胞毒性。
siRNA 質(zhì)量控制:合成的 siRNA 應(yīng)具有較高的純度和完整性。在使用前,可通過瓊脂糖凝膠電泳等方法檢測 siRNA 的質(zhì)量,確保其無降解和雜質(zhì)污染。同時,注意 siRNA 的保存條件,避免反復(fù)凍融。
優(yōu)化細胞密度:適當(dāng)調(diào)整轉(zhuǎn)染時的細胞密度,過高或過低的細胞密度都可能影響轉(zhuǎn)染效率。一般來說,需通過預(yù)實驗確定每種細胞系的最佳轉(zhuǎn)染細胞密度。
選擇合適的轉(zhuǎn)染方法:除了常規(guī)的脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染和陽離子聚合物轉(zhuǎn)染外,還有電穿孔轉(zhuǎn)染、病毒載體介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染等方法可供選擇。對于某些難以轉(zhuǎn)染的懸浮細胞系,可嘗試不同的轉(zhuǎn)染方法,以找到適合的轉(zhuǎn)染方式。
使用轉(zhuǎn)染增強劑:在轉(zhuǎn)染過程中,可添加一些轉(zhuǎn)染增強劑,如細胞松弛素 B、氯喹等,來提高轉(zhuǎn)染效率。但需注意轉(zhuǎn)染增強劑的濃度和作用時間,避免對細胞造成過度損傷。
優(yōu)化培養(yǎng)條件:調(diào)整轉(zhuǎn)染后的培養(yǎng)條件,如培養(yǎng)基成分、培養(yǎng)溫度和二氧化碳濃度等,也可能對轉(zhuǎn)染效果產(chǎn)生影響。例如,某些細胞在較低的溫度下培養(yǎng)可能有助于提高轉(zhuǎn)染效率。
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