Western Blot 是當(dāng)今細(xì)胞和分子的常規(guī)方法之一 生物實(shí)驗(yàn)室。但是,分析蛋白質(zhì)印跡結(jié)果可能會(huì)導(dǎo)致用戶的問題,因?yàn)楂@得的數(shù)據(jù)可能沒有定論。為了幫助您的下一次檢測(cè),我們將常見問題和解決方案放在一起 在一個(gè)指南中。
原因之一可能是抗體選擇錯(cuò)誤。嘗試我們的網(wǎng)上商店,找到合適的一抗和二抗。如果您有任何其他問題,請(qǐng)咨詢我們的。
閱讀本故障排除指南,成為蛋白質(zhì)免疫印跡專家:
在蛋白質(zhì)印跡中使用二抗的一般技巧
無信號(hào)/低靈敏度
高背景
不特定的波段或點(diǎn)
無信號(hào)/低靈敏度
問題
未檢測(cè)到分析物。
原因/補(bǔ)救措施
檢查使用的蛋白質(zhì)量:布拉德福德測(cè)試;
支鏈氨基酸法增加蛋白質(zhì)濃度
如果可能,使用抗原表達(dá)水平高的陽性對(duì)照
使用新鮮的裂解緩沖液
向樣品緩沖液中加入蛋白酶抑制劑
將樣品儲(chǔ)存在冰上 (4°C)
分析物在電泳過程中用完凝膠
使用蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn)確保目標(biāo)蛋白質(zhì)(kDa)仍在凝膠內(nèi)。
縮短電泳時(shí)間
無需從凝膠轉(zhuǎn)移到膜
檢查蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移是否成功:麗春紅S染色
使用上樣對(duì)照(管家)來確保蛋白質(zhì)的轉(zhuǎn)移相等。
延長(zhǎng)傳輸時(shí)間
錯(cuò)誤的印跡膜
聚偏氟乙烯
需要用甲醇活化
高結(jié)合能力(170 雙 200 μg/cm2)
與硝酸纖維素膜相比,更多背景
適用于剝離緩沖液和重新探測(cè)。
硝基細(xì)胞使用
結(jié)合能力低(80 雙 100 μg/cm2)
更少的背景
為您的樣品選擇合適的孔徑:
0.1, 0.2 或 0.45μm.(0.45μm孔徑適用于大多數(shù)蛋白質(zhì)(≥20kDa))
轉(zhuǎn)移條件
轉(zhuǎn)印前去除凝膠和印跡膜之間的任何氣泡。
減少傳輸時(shí)間和/或電流(“過度傳輸”)。
阻止持續(xù)時(shí)間
縮短阻塞持續(xù)時(shí)間
室溫下1h
封閉劑的選擇
抗原掩膜
使用較低的濃度
使用其他緩沖區(qū)
我們建議使用來自同一物種的5%正常血清作為二抗或不含IgG的BSA。
強(qiáng)力洗滌
減少洗滌步驟的次數(shù)和/或持續(xù)時(shí)間
3x 5 分鐘(室溫)
降低洗滌劑的濃度
0.1-0.5% 吐溫 20
一抗錯(cuò)誤
確保您選擇的抗體適用于蛋白質(zhì)免疫印跡(數(shù)據(jù)表)
孵育時(shí)間(一抗)
延長(zhǎng)孵育時(shí)間
4°C 過夜
抗體濃度低
檢查使用的抗體濃度。
驗(yàn)證相關(guān)性
從數(shù)據(jù)表中所述的較高濃度開始。然后逐步降低注意力。
二抗錯(cuò)誤
檢查二抗是否與所選的一抗結(jié)合(數(shù)據(jù)表)
辣根過氧化物酶(HRP)活性受到抑制
不要在緩沖液中使用疊氮Hua鈉。因?yàn)樗种艸RP(辣根過氧化物酶)偶聯(lián)活性。
不要使用甘油與ACS等級(jí)低于99,5%。因?yàn)樗种艸RP(辣根過氧化物酶)偶聯(lián)活性。
避免反復(fù)冷凍和解凍抗體溶液。
準(zhǔn)備小等分試樣
抗體儲(chǔ)存技巧
ECL試劑已過期
使用新鮮的ECL試劑
ECL試劑污染
使用新鮮的ECL試劑
曝光時(shí)間
根據(jù)抗原表達(dá)水平的不同,暴露時(shí)間可能會(huì)有所不同
通過小步驟增加暴露時(shí)間
高背景
問題
原因/補(bǔ)救措施
高抗原表達(dá)水平
降低蛋白質(zhì)濃度
封閉劑的選擇
如果需要檢測(cè)磷酸化蛋白質(zhì),請(qǐng)勿使用奶粉。
一抗可能與酪蛋白發(fā)生交叉反應(yīng)
如果使用鏈霉親和素/親和素偶聯(lián)物,請(qǐng)勿使用奶粉。
牛奶含有內(nèi)源性生物素
BSA和奶粉不適用于檢測(cè)山羊、牛或綿羊的二抗。
二抗可能與來自BSA或奶粉的牛免疫球蛋白發(fā)生交叉反應(yīng)
我們建議使用來自同一物種的5%正常血清作為二抗或不含IgG的BSA。
孵育時(shí)間(封閉試劑)
延長(zhǎng)孵育時(shí)間
室溫下1h
一抗?jié)舛儒e(cuò)誤
降低一抗?jié)舛?/p>
滴定
二抗?jié)舛儒e(cuò)誤
降低二抗?jié)舛?/p>
滴定
洗滌
曝光時(shí)間
增加洗滌步驟的數(shù)量和/或持續(xù)時(shí)間
3 x 5分鐘 – 5 x 5分鐘
將吐溫 20 添加到洗滌緩沖液中
(0.1-0.5%)
使用振動(dòng)篩
根據(jù)抗原表達(dá)水平的不同,暴露時(shí)間可能會(huì)有所不同
轉(zhuǎn)印膜
處理膜時(shí)使用鑷子
膜不應(yīng)變干
檢測(cè)試劑
降低底物濃度
不特定的條帶或點(diǎn)
問題
原因/補(bǔ)救措施
蛋白質(zhì)被 降解
使用新鮮的裂解物
將樣品儲(chǔ)存在冰上 (4°C)
將蛋白酶抑制劑添加到樣品緩沖液中
樣品條件
檢測(cè)到錯(cuò)誤的亞型
翻譯后修飾
分子量變化,可能導(dǎo)致雙條帶
如果可能,使用陽性對(duì)照
如果可能,使用陰性對(duì)照
樣品和/或緩沖液的細(xì)菌污染
準(zhǔn)備新鮮樣品或緩沖液
使用去離子水
轉(zhuǎn)印膜
轉(zhuǎn)印前去除凝膠和印跡膜之間的任何氣泡。
在封閉之前快速清洗膜,以去除任何殘留的凝膠或SDS。
一抗
驗(yàn)證一抗的特異性結(jié)合
在對(duì)照實(shí)驗(yàn)中使用不含一抗的二抗。
優(yōu)化抗體濃度(滴定)。