PCR（聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)）的原理是DNA要經(jīng)歷變性、退火、延伸步驟才能與引物、DNA聚合酶、dNTP結(jié)合形成新的雙鏈DNA分子，但實(shí)際需要的目標(biāo)片段，得在三個(gè)循環(huán)之后才能得到。因此擴(kuò)增循環(huán)數(shù)不能低于3，推薦循環(huán)數(shù)為30-40個(gè)循環(huán)。PCR產(chǎn)物的得率計(jì)算公式為：

PCR產(chǎn)物得率=2N copies（N代表循環(huán)數(shù)）

但實(shí)際上，隨著循環(huán)數(shù)的增加，體系中的Taq酶、dNTP、引物等逐漸被消耗并伴隨著副產(chǎn)物的生成，使得PCR不能呈指數(shù)擴(kuò)增，從而使實(shí)際的擴(kuò)增曲線呈現(xiàn)“S”型，通常分為基線期、指數(shù)增長(zhǎng)期和平臺(tái)期三個(gè)階段，如圖所示。

PCR擴(kuò)增曲線

循環(huán)數(shù)作為一個(gè)關(guān)鍵步驟，直接影響PCR反應(yīng)的結(jié)果。

如果DNA模板量較少，而循環(huán)次數(shù)太少，會(huì)導(dǎo)致目標(biāo)DNA片段擴(kuò)增產(chǎn)量低。

過(guò)多的循環(huán)雖然能增加產(chǎn)物量，但會(huì)導(dǎo)致反應(yīng)時(shí)間過(guò)長(zhǎng)，非特異性產(chǎn)物擴(kuò)增和假陽(yáng)性的風(fēng)險(xiǎn)也隨之上升。一般而言，PCR產(chǎn)物在25～35次循環(huán)后即可達(dá)最大值，進(jìn)入“平臺(tái)期”。隨著副產(chǎn)物的積累以及試劑的消耗，即使再增加循環(huán)數(shù)，PCR產(chǎn)物量也不會(huì)再有明顯增加，出現(xiàn)擴(kuò)增無(wú)法持續(xù)的停滯現(xiàn)象。

圖1. 10167擴(kuò)增576 bp大腸桿菌菌液，基因來(lái)源：擬南芥，性能優(yōu)于競(jìng)品。延伸時(shí)間為30 sec/kb。循環(huán)數(shù)34 cycles。

引物設(shè)計(jì)過(guò)程中，需考慮TM值，GC含量、引物長(zhǎng)度、引物二聚體的形成，但是往往會(huì)忽視3’末端的堿基，小翌建議小伙伴們引物3’末端的堿基最好為G或者C，可以提高引物與模板之間的結(jié)合穩(wěn)定性，降低產(chǎn)物的錯(cuò)配。

正常引物合成的量為2 OD，引物最初為干粉狀，依據(jù)引物質(zhì)量添加水至100 μmoL/L濃度（儲(chǔ)存液），要使用時(shí)稀釋10倍至10 μmoL/L濃度（工作液）即可。

在干粉狀階段，務(wù)必在3000 rpm/min條件下，離心1 min。如果未離心，在引物寄送的過(guò)程中，隨著快遞的上下翻飛，干粉會(huì)掛壁在管內(nèi)各處，添加的去離子水無(wú)法與所有引物混合，導(dǎo)致引物濃度變低，在后續(xù)的實(shí)驗(yàn)中可能會(huì)導(dǎo)致目的片段的少量擴(kuò)增或無(wú)擴(kuò)增。

那有的小伙伴希望PCR產(chǎn)物量高，多加一點(diǎn)引物可以嗎？也是不行的，引物濃度如果過(guò)高，易造成錯(cuò)配和非特異性擴(kuò)增，且引物自身結(jié)合的概率增大，更易生成引物二聚體。

如下表顯示，10167ES引物添加量的終濃度為0.4-0.5 μM。依據(jù)說(shuō)明書進(jìn)行實(shí)驗(yàn)，PCR實(shí)驗(yàn)就可以事半功倍哦~

因?yàn)樾』锇榈囊镒鳛榉磸?fù)凍融使用的材料，在使用過(guò)程中易造成污染，導(dǎo)致非特異擴(kuò)增，所以小翌建議在使用過(guò)程中，引物作為ddH20之后，優(yōu)先添加的材料，防止因槍頭未更換等因素污染引物。

加樣步驟推薦：ddH20＞引物＞模板＞Mix酶

Mix酶最后添加：防止因過(guò)早添加酶試劑導(dǎo)致引物提早合成引物二聚體，避免非特異擴(kuò)增，且大部分PCR Mix酶攜帶指示劑，可以用于區(qū)分該試管是否加樣完成。

需注意，PCR為冰上操作的實(shí)驗(yàn)，但冰塊融化之后，如冰水浸沒引物、模板管子，易造成交叉污染，導(dǎo)致陰性對(duì)照出現(xiàn)假陽(yáng)性。建議丟棄被冰水浸沒過(guò)的試劑，更換新試劑做實(shí)驗(yàn)?；蚴褂媒饘俦校杀苊獍l(fā)生浸沒的情況。

模板DNA在儲(chǔ)存的過(guò)程中會(huì)有一定程度的降解，因此放置前測(cè)試的濃度不一定準(zhǔn)確，為了保證實(shí)驗(yàn)精度，在放置一段時(shí)間后，需重新測(cè)試DNA模板濃度。

小翌提醒，在進(jìn)行酵母菌P的時(shí)候，需盡量將酵母模板處理好，有助于提高PCR擴(kuò)增效率：酵母菌菌液及菌株煮沸5 min后放入-80℃冰箱3 min，待解凍后上樣。

10167ES擴(kuò)增酵母菌

PCR技術(shù)雖然基礎(chǔ)，但也需要精確的控制和細(xì)心的調(diào)整。通過(guò)關(guān)注這些小細(xì)節(jié)，可以提高PCR實(shí)驗(yàn)的成功率，為你的實(shí)驗(yàn)和研究打下堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)。小翌提醒大家，見微知著，每一個(gè)小細(xì)節(jié)都可能成為PCR成功的關(guān)鍵。在分子生物學(xué)的世界里，細(xì)節(jié)往往決定成敗。小翌希望能夠幫助各位科研工作者更好地理解和掌握PCR技術(shù)，從而在研究中取得更好的成果！

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快速、高效、抑制停滯現(xiàn)象、提高產(chǎn)量

圖1. 大腸桿菌菌落極限延伸時(shí)間擴(kuò)增測(cè)試，3 kb以內(nèi)片段10167ES擴(kuò)增的延伸效率可達(dá)1 sec/kb，6 kb片段擴(kuò)增的延伸效率可達(dá)3 sec/kb，6-10 kb片段擴(kuò)增的延伸效率可達(dá)5 sec/kb。M：10,000 DNA Marker（10505ES）。

圖2. 長(zhǎng)片段+高GC菌液擴(kuò)增，結(jié)果顯示10167ES擴(kuò)增產(chǎn)量高，檢出率100%，性能優(yōu)于競(jìng)品。M：10,000 DNA Marker（10505ES）。10167ES擴(kuò)增速度10 sec/kb，競(jìng)品擴(kuò)增15 sec/kb。