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Western Blot 常見(jiàn)問(wèn)題分析

來(lái)源:武漢貝茵萊生物科技有限公司   2010年06月28日 17:49  

. 在western實(shí)驗(yàn)中,通常有人采用TBS,有人采用PBS,在使用中有什么區(qū)別?
選擇合適的緩沖液對(duì)于維持一定PH值下蛋白質(zhì)的穩(wěn)定及保證實(shí)驗(yàn)的重復(fù)性是很重要的。PBS的緩沖能力強(qiáng)于TBS(因?yàn)榛旌暇彌_液在一定的離子強(qiáng)度下常常具有更寬的緩沖范圍),TBS在PH7.0以下緩沖能力較弱(不過(guò)PBS易污染)。但我們常常要根據(jù)我們實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪x用合適的緩沖液,如在蛋白純化中進(jìn)行陰離子交換層析,陽(yáng)離子緩沖液TBS;陽(yáng)離子交換層析時(shí),陰離子緩沖液則PBS。
western blot中使用TBS和PBS均可,只是要根據(jù)需要選擇合適的濃度。

2. 沒(méi)有注明可以用來(lái)做western blot的一抗,可以用來(lái)做western blot嗎?
不一定,因?yàn)橛械目贵w是識(shí)別線性表位的,有的是識(shí)別構(gòu)象型表位的,識(shí)別構(gòu)象型表位的抗體不能用于western blotting,因?yàn)樵趙estern blotting中抗體識(shí)別的是*變性的蛋白質(zhì)抗原,而蛋白質(zhì)抗原的構(gòu)象型表位變性時(shí)被破壞。

3. 做western每次只加一種一抗,可以同時(shí)加兩種或者多種一抗的嗎?
還是不要同時(shí)加兩種一抗。因?yàn)槿绻Y(jié)果里面有非特異信號(hào)的話,就說(shuō)不清楚了。做Western在同一張膜上檢測(cè)目的蛋白和內(nèi)對(duì)照,也是先上目的蛋白的一抗、二抗,ECL顯色、壓片、洗片;漂洗以后,再上內(nèi)對(duì)照的一抗、二抗,ECL顯色、壓片、洗片。

4. western blot 使用的膜哪種啊,PVDF好還是NC膜,如何選擇?
PVDF膜價(jià)格較貴,可重復(fù)使用,特別適合蛋白印跡,結(jié)合能力較強(qiáng),但價(jià)格比較昂貴。 NC膜價(jià)格比較便宜,應(yīng)用較廣,結(jié)合牢固性差一些,韌性也不如PVDF,不能重復(fù)使用,但蛋白吸附容量高,親水性較好。 都可以用麗春紅染色。具體使用還要參考相關(guān)文獻(xiàn)。

5. 為什么出現(xiàn)了多條帶,每個(gè)加樣槽中都出現(xiàn)了多條帶,而且好象都很有規(guī)律,為什么?是封閉時(shí)間不夠嗎?做WESTERN必須要內(nèi)參嗎?
一抗、或二抗抗體濃度太高,多克隆抗體本身的非特異性反應(yīng),抗體的特異性不強(qiáng),目的蛋白經(jīng)過(guò)處理后發(fā)生變化,而內(nèi)參的條帶基本均勻一致.這樣才有說(shuō)服力,表明的確是處理因素造成目的蛋白的變化而不是加樣誤差或認(rèn)為的造成目的條帶濃度的變化.所以嚴(yán)格意義上說(shuō),內(nèi)參是必須做的。
6. western用的一抗,單抗好些還是用多抗好些?用于western的抗體和用于ELISA的抗體有什么不同的要求?

作為western來(lái)講,理論上單抗比多抗的特異性要好,但單抗種類較少一般價(jià)格偏高,所以一般來(lái)說(shuō)多抗足夠了。用于western的抗體和用于ELISA的抗體,一般來(lái)說(shuō)用于western的抗體識(shí)別的是氨基酸序列特異性;而可用于ELISA的抗體則要看抗原種類,有些是識(shí)別氨基酸序列特異性,有些是識(shí)別構(gòu)像特異性。所以一般根據(jù)抗體說(shuō)明書(shū)來(lái)確定。
做免疫印跡時(shí)選擇抗體主要應(yīng)考慮兩個(gè)問(wèn)題,一是所選抗體是否能識(shí)別凝膠電泳后轉(zhuǎn)印至膜上的變性蛋白,另一個(gè)是所選抗體是否會(huì)引起交叉反應(yīng)條帶。

7. 半干轉(zhuǎn)是否要求膜,濾紙,膠同樣大???因?yàn)槟z大小不一定規(guī)則,膜和濾紙會(huì)大一點(diǎn),那樣會(huì)不會(huì)短路?什么是短路?如何控制和發(fā)現(xiàn)短路呢?

可以相等,但是如果紙、膜比凝膠大就比較容易形成短路了,上下兩層慮紙也不能因過(guò)大而相互接觸,這樣同樣會(huì)短路,電流不會(huì)通過(guò)膠和慮紙。轉(zhuǎn)移前和轉(zhuǎn)移過(guò)程中看看電壓就行,正常的半干是慢慢變高的, zui后結(jié)束時(shí)一般是開(kāi)始的1.5-3倍都是正常的。一般Buffer和濾紙選的對(duì)就不會(huì)短路。

8. Western Blot哪種染色好?
(1) 陰離子染料是較常用的,特別是氨基黑,脫色快,背景低檢測(cè)極限可達(dá)到1.5μg,考馬斯亮藍(lán)雖然與氨基黑有相同的靈敏度,但脫色慢,背景高。麗春紅S和快綠在檢測(cè)后容易從蛋白質(zhì)中除去 ,以便進(jìn)行隨后的氨基酸分析。缺點(diǎn)是:溶劑系統(tǒng)的甲醇會(huì)引起硝化纖維素膜的 皺縮或破壞。不能用語(yǔ)正電賀的膜。靈敏度低。
(2) 膠體金,靈敏度高,檢測(cè)范圍可到pg級(jí),但染色比穩(wěn)定。
(3) 生物素化靈敏度位于1、2之間,可用于任何一種膜。

9. 不能很好地將大分子量蛋白轉(zhuǎn)移到膜上, 轉(zhuǎn)移效率低怎么樣解決?
可以考慮:轉(zhuǎn)移緩沖液中加入20%甲醇(是指終濃度)(優(yōu)化的轉(zhuǎn)移緩沖液,可以參考《蛋白質(zhì)技術(shù)手冊(cè)》),因?yàn)榧状伎山档偷鞍踪|(zhì)洗脫效率,但可增加蛋白質(zhì)和NC膜的結(jié)合能力,甲醇可以防止凝膠變形,甲醇對(duì)高分子量蛋白質(zhì)可延長(zhǎng)轉(zhuǎn)移時(shí)間;轉(zhuǎn)移緩沖液加入終濃度0.1%SDS,也是為了增加轉(zhuǎn)移效率;用的轉(zhuǎn)移膜,或使用小孔徑的NC膜(0.2微米);使用戊二醛交聯(lián);低濃度膠,如低至6%。太大時(shí)還可以考慮用瓊脂糖膠;提高轉(zhuǎn)移電壓/電流;增加轉(zhuǎn)移時(shí)間。

10. DAB顯色、堿性磷酸酶-抗堿性磷酸酶顯色原理是什么?
DAB顯色在辣根過(guò)氧化酶的作用能形成一種灰褐色的終末產(chǎn)物,該產(chǎn)物難溶于醇和其他有機(jī)溶劑,DAB的氧化還能引起聚合作用,導(dǎo)致與四氧化鋨反應(yīng)而增加其染色強(qiáng)度和電子密度。堿性磷酸酶-抗堿性磷酸酶顯色中,酶將奈酚磷酸(底物)水解成酚類和磷酸。酚和無(wú)色的重氮鹽(顯色原)結(jié)合而產(chǎn)生有色的、不溶性偶氮染料。

11. 酶顯色與熒光顯色之間,各自的優(yōu)缺點(diǎn)是什么?
免疫酶技術(shù)就是用酶(如辣根過(guò)氧化物酶)標(biāo)記已知抗體(或抗原),然后與組織標(biāo)本在一定條件下反應(yīng),如果組織中含有相應(yīng)抗原(或抗體),抗原抗體相互結(jié)合形成的復(fù)合物中所帶酶分子遇到底物時(shí),能催化底物水解、氧化或還原,產(chǎn)生顯色反應(yīng),這樣就可以識(shí)別出標(biāo)本抗原(抗體)分布的位置和性質(zhì),通過(guò)圖像分析并可達(dá)到定量的目的。
免疫熒光技術(shù)雖已廣泛應(yīng)用于免疫學(xué)的研究與診斷,但是熒光抗體染色標(biāo)本不能長(zhǎng)期保存,對(duì)組織細(xì)胞的細(xì)微結(jié)構(gòu)分辨不清,免疫酶技術(shù)則能克服上述不足,標(biāo)記免疫酶技術(shù)的敏感性更優(yōu)于免疫熒光法,對(duì)石蠟切片標(biāo)本尤為適用,為免疫病理研究開(kāi)辟了一條新途徑,酶顯色產(chǎn)物具有較高的電子密度,經(jīng)過(guò)適當(dāng)處理還可以進(jìn)行免疫電鏡觀察,免疫酶組化技術(shù)分為酶標(biāo)記法與非標(biāo)記抗體技術(shù),前者是將酶通過(guò)交聯(lián)劑結(jié)合在抗體分子上,形成酶標(biāo)記抗體。后者是將酶作為抗原與相應(yīng)的特異性抗體連接進(jìn)行的免疫反應(yīng),稱為非標(biāo)記抗體酶技術(shù)。

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