8
顯微操作
| 瑞士Cytosurge公司顯微操作—FluidFM OMNIUM，是將原子力系統(tǒng)、微流控系統(tǒng)、細胞培養(yǎng)系統(tǒng)為體的單細胞操作系統(tǒng)。主要功能包括單細胞注射、單細胞提取、單細胞分離、單細胞粘附力的測定、生物3D打印等。 FluidFM OMNIUM打開了傳統(tǒng)單細胞實驗手段無法觸及域的大門。突破了單細胞研究、藥物開發(fā)、細胞系開發(fā)中的障礙，讓細胞膜不再成為阻礙單細胞研究的壁壘。 顯微操作FluidFM OMNIUM濃縮了FluidFM技術的全部精華，尤其是在自動化程度和操作速度上的提高。它不僅保留了產品在生物學上的能力，更能夠將這些功能進行組合來創(chuàng)造更加高效、便捷全新的試驗方法。 |
應用域：
FluidFM OMNIUM方便了單細胞水平的研究，尤其適合應用于醫(yī)療、單細胞生物學、單細胞質譜、單細胞基因編輯、藥物研發(fā)等域。
基本參數(shù)：
- 單細胞水平的顯微注射、提取、分離以及細胞粘附力測定，全過程通過軟件設置自動化完成；
- 全自動進行細胞核、細胞質定位注射；
- 軟件自動更換探針更換，無需手動加載；
- 樣品臺移動精度：XY軸不大于1 nm；Z軸不大于0.2nm；
- 探針力學控制：提供探針當前壓力值并繪制曲線；
- 配置高靈敏度液體微流控系統(tǒng)，流體壓力控制精度：±0.5 mbar；
設備點：
進 | 體 無需購買 額外設備 | 簡易 輕點鼠標 | 可控 所有變量均可 通過軟件操縱 |
| 單細胞注射 無損注入的將不同類型的物質準確注入到細胞質或者細胞核。 每小時可注射>100個細胞。 |
| 單細胞提取 提取后細胞仍可存活。 |
| 細胞分離 無論懸浮或者貼壁細胞均可分離或者分選。整個過程對細胞無損傷。 |
| 點打印 納米精度的高密度點打印能夠快速建立使用諸如蛋白、DNA等物質 構成生物感應列陣。 |
| 納米光刻技術 打印納米精度的各種生物分子所構成的復雜圖案。 |
單細胞注射——快速、準確、低損傷
| 更的CRISPR-Cas轉染方式： 能夠進行高速、高效地將CRISPR-Cas復合物注入細胞，幫助您克服對于傳統(tǒng)方式難轉染的細胞基因編輯問題。 |
| 提高質粒的轉染效率： 相比于傳統(tǒng)的轉染方式，F(xiàn)luidFM更加溫和、快速，對細胞的損傷更小。 |
| 貼壁細胞均可注射： 對于注射細胞的種類，本產品并沒有太多的限制，即使像心肌細胞這樣的注射難度很高的細胞也能夠勝任。 |
| 準確注入體積計算： 通過比對注入熒光分子物質的熒光強度準確計算注入熒光分子的體積。 |
單細胞提取——微量、低創(chuàng)、準確
| 活細胞提取 從活細胞中直接提取內容物，并且提取后細胞仍可存活。 |
| 電鏡成像 相比于傳統(tǒng)的裂解方式，F(xiàn)luidFM OMNIUM提取的樣本更為干凈，可以得到很好地電鏡圖像。 |
| mRNA、酶活力的檢測 FluidFM OMNIUM提取的樣本也可以直接用于酶活力的測定或mRNA的檢測。 |
| 單細胞質譜分析 FluidFM OMNIUM提取樣本也可應用于單細胞代謝組學樣本的質譜分析。 |
單細胞分離——直觀、簡單、低損
FluidFM® 氣呵成的細胞分離過程 使用FluidFM OMNIUM分離CHO細胞，僅僅點擊幾次鼠標，單個細胞便準確的完成了轉移。
|
小樣本細胞群分離十分友好 對于細胞數(shù)不足以使用流式細胞儀分選時，F(xiàn)luidFM OMNIUM很好的*。
|
測試數(shù)據(jù)
肝細胞的微量注射
HeLa細胞的微量提取
CHO細胞的單細胞分離
納米光刻DAPI染料
發(fā)表文章
單細胞注射：
1. O.Guillaume-Gentil, E.Potthoff, D.Ossola, et al. Force-controlled fluidic injection into single cell nuclei.(2013)Small,9(11),1904?1907. doi:10.1002/ smll.201202276A.
2. Meister, M. Gabi, P.Behr, et al. FluidFM: Combining atomic force microscopy and nanofluidics in a universal liquid delivery system for single cell applications and beyond.(2009) Nano Letters, 9(6), 2501?2507. doi:10.1021/nl901384x
單細胞提?。?/strong>
1. O. Guillaume-Gentil, T. Rey, P. Kiefer, A.J. Ibá?ez, R. Steinhoff, R. Br?nnimann, L. Dorwling-Carter, H. Zambelli, R. Zenobi & J.A. Vorholt. Single-Cell Mass Spectrometry of Metabolites Extracted from Live Cells by Fluidic Force Microscopy. (May 2017) Anal Chem., 89(9), 5017-5023. doi:10.1021/acs.analchem.7b00367
2. O. Guillaume-Gentil, R.V. Grindberg, R. Kooger, L. Dorwling-Carter, V. Martinez, D. Ossola, M. Pilhofer, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Tunable Single-Cell Extraction for Molecular Analyses. (Jul 2016) Cell, 166(2), 506-516. doi: 10.1016/j. cell.2016.06.025.
單細胞分離：
1. O. Guillaume-Gentil, T. Zambelli & J.A. Vorholt.Isolation of single mammalian cells from adherent cultures by fluidic force microscopy. (2014) Lab on a chip, 14(2), 402-414. doi:10.1039/c3lc51174j
2. P. Stiefel, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Isolation of optically targeted single bacteria by application of fluidic force microscopy to aerobic anoxygenic phototrophs from the phyllosphere. (2013) Applied and Environmental Microbiology, 79(16), 4895-4905. doi:10.1128/AEM.01087-13P.
3. D?rig, P. Stiefel, P. Behr, et al. Force-controlled spatial manipulation of viable mammalian cells and micro-organisms by means of FluidFM technology.(2010) Applied Physics Letters, 97(2), 023701 1-3. doi:10.1063/1.3462979
新發(fā)表：
2021
1. M. Mathelié-Guinlet, F. Viela, J. Dehullu, S. Filimova, J.M. Rauceo, P.N. Lipke & Y.F. Dufrêne. Single-cell fluidic force microscopy reveals stress-dependent molecular interactions in yeast mating. (2021) Commun Biol. doi: 10.1038/s42003-020-01498-9
AFM Series: Adhesion of single cells
2020
1. A.G. Nagy, A. Bonyár, I. Székács & R. Horvath. Analysis of single-cell force-spectroscopy data of Vero cells recorded by FluidFM BOT. (2020) IEEE 26th International Symposium for Design and Technology in Electronic Packaging (SIITME). doi: 10.1109/SIITME50350.2020.9292265, BIO Series: Adhesion of single cells
2. I. Demir, J. Blockx, E. Dague, P. Guiraud, W. Thielmans, K. Muylaert & C. Formosa-Dague. Nanoscale Evidence Unravels Microalgae Flocculation Mechanism Induced by Chitosan. (2020) ACS Applied Biomaterials. doi: 10.1021/acsabm.0c007722. AFM Series: Adhesion of single cells
3. P. Saha, T. Duanis-Assaf & M. Reches. Fundamentals and Applications of FluidFM Technology in Single-Cell Studies. (2020) Advanced Materials Interfaces. doi: 10.1002/admi.20001115. AFM Series: REVIEW
4. T. Schlotter, S. Weaver, C. Forró, D. Momotenko, J. Voros, T. Zambelli & M. Aramesh. Force-Controlled formation of dynamic nanopores for single-biomolecule sensing and single-cell secretomics. (2020) ACS Nano. doi: 10.1021/acs.nano.0c04281. AFM Series: SICM, other
5. L. Hofherr, C. Müller-Renno, C. Ziegler. FluidFM as a tool to study adhesion forces of bacteria - Optimization of parameters and comparison to conventional bacterial probe Scanning Force Spectroscopy. (2020). PLOS ONE. doi: 10.1371/journal.pone.0227395. AFM Series: Adhesion of single bacteria
6. T. Schlotter, S. Weaver, T. Zambelli, J. Voros & M. Aramesh. Force-controlled nanopores for single cell measurements using micro-channelled AFM Cantilevers. (2020). Biophysical Journal. doi: 10.1016/j.bpj.2019.11.1066. AFM Series: Other
7. J. Zhang, H. Yu, B. Harris, Y. Zheng, U. Celik, L. Na, R. Faller, X. Chen, D. R. Haudenschild, G. Liu. New Means to Control Molecular Assembly (2020) ACS Publications. doi.org/10.1021/acs.jpcc.9b11377. BIO Series: Nanolithography
8. P. Wysotzki, A. Sancho, J. Gimsa, J. Groll. A comparative analysis of detachment forces and energies in initial and mature cell-material interaction (2020) Science Direct. doi.org/10.1016/j.colsurfb.2020.110894. AFM Series: Single Force Spectroscopy
9. M. Sztilkovics, T. Gerecsei, B. Peter, A. Saftics, S. Kurunczi, I. Szekacs, B. Szabo & R. Horvath. Single-cell adhesion force kinetics of cell populations from combined label-free optical biosensor and robotic fluidic force microscopy. (2020) Scientific Reports. doi: 10.1038/s41598-019-56898-7. BIO Series: Adhesion of single cells
用戶單位
國內用戶：
國外用戶：
