CD31內(nèi)皮細(xì)胞標(biāo)記（鼠單克隆抗體）

廣州健侖生物科技有限公司

CD31抗原（PECAM-1）是140kDa的細(xì)胞膜表面單鏈糖蛋白，主要表達(dá)于血小板、單核細(xì)胞、粒細(xì)胞、B淋巴細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞。此抗體主要用于良/惡性血管源性腫瘤以及各種腫瘤間質(zhì)中血管生成狀況的研究。

我司還提供其它進(jìn)口或國產(chǎn)試劑盒：登革熱、瘧疾、流感、A鏈球菌、合胞病毒、腮病毒、乙腦、寨卡、黃熱病、基孔肯雅熱、克錐蟲病、違禁品濫用、肺炎球菌、軍團(tuán)菌、化妝品檢測(cè)、食品安全檢測(cè)等試劑盒以及日本生研細(xì)菌分型診斷血清、德國SiFin診斷血清、丹麥SSI診斷血清等產(chǎn)品。

歡迎咨詢

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【產(chǎn)品介紹】

細(xì)胞定位：細(xì)胞膜/細(xì)胞漿

克隆號(hào)：JC70

同型：IgG1/K

適用組織：石蠟/冰凍

陽性對(duì)照：扁桃體

抗原修復(fù)：熱修復(fù)（EDTA）

抗體孵育時(shí)間：30-60min

CD31內(nèi)皮細(xì)胞標(biāo)記（鼠單克隆抗體）

此法的缺點(diǎn)是：
（1）由于各種蛋白質(zhì)中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同，因此Bradford法用于不同蛋白質(zhì)測(cè)定時(shí)有較大的偏差，在制作 標(biāo)準(zhǔn)曲線時(shí)通常選用 g―球蛋白為標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)，以減少這方面的偏差。
（2）仍有一些物質(zhì)干擾此法的測(cè)定，主要的干擾物質(zhì)有：去污劑、 Triton X-100、十二烷基硫酸鈉（SDS）和0.1N的NaOH。（如同0.1N的酸干擾Lowary法一樣）。
（3）標(biāo)準(zhǔn)曲線也有輕微的非線性，因而不能用Beer定律進(jìn)行計(jì)算，而只能用標(biāo)準(zhǔn)曲線來測(cè)定未知蛋白質(zhì)的濃度。
（二）試劑與器材
1. 試劑：
（1）標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液，用 g―球蛋白或牛血清清蛋白(BSA)，配制成1.0mg/ml和0.1mg/ml的標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液。
（2）考馬斯亮蘭G―250染料試劑：稱100mg考馬斯亮蘭G―250，溶于50ml 95%的乙醇后，再加入120ml 85%的磷酸，用水稀釋至1升。
2. 器材：
（1）可見光分光光度計(jì) （2）旋渦混合器 （3）試管16支
（三）操作方法
1. 標(biāo)準(zhǔn)方法
（1）取16支試管，1支作空白，3支留作未知樣品，其余試管分為兩組按表中順序，分別加入樣品、水和試劑，即用1.0mg/ml的標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液給各試管分別加入：0、0.01、0.02、0.04、0.06、0.08、0.1ml，然后用無離子水補(bǔ)充到0.1ml。zui后各試管中分別加入5.0ml考馬斯亮蘭G―250試劑，每加完一管，立即在旋渦混合器上混合（注意不要太劇烈，以免產(chǎn)生大量氣泡而難于消除）。未知樣品的加樣量見下表中的第8、9、10管。

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The disadvantage of this method is:
(1) Due to the different content of arginine and aromatic amino acids in various proteins, Bradford method is used to measure different proteins with larger deviations, g-globulin is usually selected as the standard protein in the production of standard curve, To reduce this deviation.
(2) There are still some substances that interfere with the determination of this method. The main interfering substances are: detergent, Triton X-100, sodium dodecyl sulfate (SDS) and 0.1N NaOH. (Like the 0.1 N acid interference Lowary method).
(3) The standard curve is also slightly non-linear and therefore can not be calculated using the Beer's Law. The standard curve can only be used to determine the unknown protein concentration.
(B) Reagents and equipment
Reagents:
(1) Standard protein solution, formulated with standard protein solutions of 1.0 mg / ml and 0.1 mg / ml using g-globin or bovine serum albumin (BSA).
(2) Coomassie brilliant blue G-250 dye reagent: 100mg Coomassie brilliant blue G-250, dissolved in 50ml 95% ethanol, then add 120ml 85% phosphoric acid, dilute to 1 liter with water.
2. Equipment:
(1) Visible spectrophotometer (2) Vortex mixer (3) 16 test tubes
(C) method of operation
1. Standard method
(1) Take 16 test tubes, one for blank, three for unknown samples, and the remaining test tubes into two groups according to the order of the table, respectively, add samples, water and reagents, ie 1.0mg / ml standard protein solution Each tube was added: 0,0.01,0.02,0.04,0.06,0.08,0.1 ml, and then added to 0.1 ml with deionized water. Finally add 5.0ml Coomassie Brilliant Blue G-250 Reagent to each test tube. Mix each tube with vortex mixer immediay. (Be careful not to be too violent to avoid large bubbles and difficult to eliminate). The amount of sample for unknown sample is shown in the following table, 8,9,10 tube.