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K562/Taxol人白血病紫

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更新時(shí)間:2025-02-11 14:05:48瀏覽次數(shù):37次

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產(chǎn)品名稱:K562/Taxol人白血病耐藥株、K562/Taxol人白血病耐藥株、K562/Taxol人白血病耐藥株、K562/Taxol人白血病耐藥株

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細(xì)胞系特征

細(xì)胞株名稱:K562/Taxol 人白血病耐藥株

種屬:智人,女性

組織來源:骨髓;慢性骨髓性白血病(CML)

生長特性:懸浮生長

形態(tài)特征:淋巴母細(xì)胞

微生物及支原體檢測(cè):陰性

細(xì)胞背景:K-562Lozzio從一位臨終的53歲女性慢性骨髓性白血病患者的胸水中建立。 細(xì)胞被歸入高度未分化的粒性白細(xì)胞類。 Anderson等對(duì)其表面膜性質(zhì)的研究表明,K-562是一株人類紅白血病細(xì)胞。 K-562細(xì)胞株在自然殺傷分析中廣泛作為高敏感的體外受體。 See Pross等將它用于NK細(xì)胞的體外詳細(xì)檢測(cè),包括NK細(xì)胞活性的數(shù)學(xué)量化。 K-562母細(xì)胞是多能性,造血惡性細(xì)胞,它能自發(fā)分化成可識(shí)別的紅血球祖細(xì)胞、粒性白細(xì)胞、單核細(xì)胞等。它是EBNA陰性的。

安全性:所有腫瘤和病毒轉(zhuǎn)染的細(xì)胞均視為有潛在的生物危害性,必須在二級(jí)生物安全臺(tái)內(nèi)操作,并請(qǐng)注意防護(hù),所有廢液及接觸過此細(xì)胞的器皿需高壓滅菌后方能丟棄。

培養(yǎng)條件:

培養(yǎng)基:90%RPMI-1640+10%胎牛血清+1%P/S+200ng/ml

血清我們推薦用:

GIBCOFBS-10099-141HYCLONEFBS-SH30084.03。

培養(yǎng)條件:37.0C carbon dioxide(CO2),5%

傳代方法:

收到細(xì)胞后,在倒置鏡下(是在4X物鏡)觀察整個(gè)細(xì)胞生長情況。

(一)如果細(xì)胞未長滿,用75%酒精噴灑整個(gè)瓶消毒后放到超菌臺(tái)內(nèi),嚴(yán)格無菌操作,低速離心,打開細(xì)胞培養(yǎng)瓶,吸出培養(yǎng)液(注意不要吸出細(xì)胞),換 10ml新鮮培養(yǎng)液后繼續(xù)培養(yǎng)。

()如果細(xì)胞已長滿,即可進(jìn)行傳代培養(yǎng)。具體步驟如下:

1. 低速離心,棄去培養(yǎng)液,用PBS(不含鈣,鎂離子)洗1-2次。

2. 6-8ml/瓶補(bǔ)加培養(yǎng)基,輕輕打勻后吸出一半,分到新的培養(yǎng)瓶中(補(bǔ)加培養(yǎng)基至810ml)。如果沒有特別說明,收到細(xì)胞后的次傳代一般是一傳二。

注:1、觀察細(xì)胞在低倍鏡(45X物鏡)下進(jìn)行,否則不能準(zhǔn)確判斷細(xì)胞的傳代密度。看細(xì)胞的形態(tài)請(qǐng)?jiān)?/strong>10X20X物鏡下。

2、瓶中運(yùn)輸培養(yǎng)基不能重復(fù)再用,請(qǐng)換用加雙抗的新培養(yǎng)基,細(xì)胞凍存后,培養(yǎng)基中可不加任何抗生素。

3、有些細(xì)胞貼壁不牢,如發(fā)現(xiàn)貼壁細(xì)胞有脫落,可離心吹打后接種到新瓶內(nèi)。

4、收到細(xì)胞后,若發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)瓶破損、有液溢出及細(xì)胞有污染,請(qǐng)及時(shí)與我們聯(lián)系。

凍存方法:

凍存液:90%胎牛血清,10%DMSO

儲(chǔ)存:液氮儲(chǔ)存

metabolic switch from glycolysis to fatty acid oxidation that is required to drive efficient CD8+ memory formation might also depend on the ability of autophagy to degrade lipid droplets [98], which has been recently shown to be essential to support neutrophil

differentiation [99]. Furthermore, metabolic defects in mitochondrial oxidative

phosphorylation may be further compounded by failure to turnover mitochondria in autophagy-deficient T cells [4, 78, 80].

37. Kim J, Kundu M, Viollet B, Guan KL. AMPK and mTOR regulate autophagy through direct phosphorylation of Ulk1. Nat Cell Biol. 2011; 13:132–141. [PubMed: 21258367]

38. Neufeld TP. TOR-dependent control of autophagy: biting the hand that feeds. Curr Opin Cell Biol. 2010; 22:157–168. [PubMed: 20006481]

39. Noda T, Ohsumi Y. Tor, a phosphatidylinositolkinase homologue, controls autophagy in yeast. J Biol Chem. 1998; 273:3963–3966. [PubMed: 9461583]

40. Delgoffe GM, Kole TP, Zheng Y, Zarek PE, Matthews KL, Xiao B, et al. The mTOR kinase differentially regulates effector and regulatory T cell lineage commitment. Immunity. 2009; 30:832–844. [PubMed: 19538929]

41. Delgoffe GM, Pollizzi KN, Waickman AT, Heikamp E, Meyers DJ, Horton MR, et al. The kinase mTOR regulates the differentiation of helper T cells through the selective activation of signaling by mTORC1 and mTORC2. Nat Immunol. 2011; 12:295–303. [PubMed: 21358638]


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