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更新時(shí)間:2024-02-28 15:52:37瀏覽次數(shù):1407

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保修期限 6個(gè)月 產(chǎn)地類別 進(jìn)口
產(chǎn)品成色 全新 使用年限 7年以上
應(yīng)用領(lǐng)域 醫(yī)療衛(wèi)生,環(huán)保,食品,生物產(chǎn)業(yè),石油
ABI7500熱蓋 本公司可以大量提供ABI7500PCR儀 全新或維修熱蓋部件(Cover)超長(zhǎng)保修,可安排工程師全國(guó)上門安裝及調(diào)試,*

詳細(xì)介紹

ABI7500熱蓋簡(jiǎn)介:
本公司可以大量提供ABI7500/7300這PCR儀全新或維修熱蓋部件(Cover)超長(zhǎng)保修,可安排工程師全國(guó)上門安裝及調(diào)試,*。
現(xiàn)貨供應(yīng)ABI 7500、ABI 7500 Fast熒光定量PCR儀,,美國(guó)進(jìn)口翻新儀器,一年保修期。
大量現(xiàn)貨低價(jià)供應(yīng)各種進(jìn)口品牌的熒光定量PCR儀。 
ABI7500熱蓋應(yīng)用:
一. 開 機(jī)
1. 確認(rèn)電腦與主機(jī)的數(shù)據(jù)通訊線(灰色USB連線)連接正確。
2. 確認(rèn)電腦處于外接電源供電狀態(tài)。
3. 啟動(dòng)電腦,以Administrator用戶名登錄,進(jìn)入Windows2000操作系統(tǒng)。
4. 待桌面圖標(biāo)出現(xiàn)后,打開7000主機(jī)的電源。
5. 待主機(jī)的電源指示燈點(diǎn)亮后,啟動(dòng)7000 SDS應(yīng)用軟件。
在進(jìn)行實(shí)驗(yàn)之前,請(qǐng)先檢查樣品加熱模塊以確定它沒有受到熒光污染,具體方法請(qǐng)按照第6節(jié)的“熒光污染的檢查與處理”流程進(jìn)行。
二. 實(shí)時(shí)定量的軟件運(yùn)行
基因表達(dá)的絕對(duì)定量和相對(duì)定量研究、轉(zhuǎn)基因食品的檢測(cè)(GMO)、各種病原體的檢驗(yàn)檢疫等各種定量應(yīng)用;以CT值的大小作為樣品陰性、陽(yáng)性判定依據(jù)的定性應(yīng)用;以及SNP檢測(cè)、等位基因鑒定實(shí)驗(yàn)等的第一步PCR擴(kuò)增,都是采用實(shí)時(shí)定量模式,按照以下步驟操作。
1. 新建文件 菜單File → New,Assay選擇Absolute Quantification (實(shí)時(shí)定量模式),打開一個(gè)空白的96孔板文件。

2. 探針設(shè)置 雙擊任意一個(gè)孔,打開Well Inspector窗口。該窗口也可以從菜單View → Well Inspector打開。
3. 使用軟件,或者探針(Detector)沒有設(shè)置好,請(qǐng)點(diǎn)擊Add Detector按鈕,打開Detector Manager窗口。該窗口也可以從菜單Tools → Detector Manager打開。如果Detector列表中沒有合適的探針,點(diǎn)擊按鈕File → New,新建探針:設(shè)定探針的名稱(建議使用所研究基因符號(hào),如GAPDH、ACTIN等)、報(bào)告基團(tuán)(FAM或者VIC)、淬滅基團(tuán)(TaqMan探針選TAMRA;MGB探針選None)、顏色等。設(shè)置完成后點(diǎn)擊OK,該探針即出現(xiàn)在探針列表中。重復(fù)此過程,設(shè)立其他的探針。
4. 在Detector Manager窗口,從探針列表中點(diǎn)擊選擇所需探針,按住Ctrl鍵可以選擇多個(gè)探針,再點(diǎn)擊Add to Plate Document按鈕。最后點(diǎn)擊Done關(guān)閉Detector Manager窗口。此時(shí)Well Inspector窗口仍然是打開的。
5. 填樣品表 在96孔表中選定有樣品的一個(gè)或多個(gè)孔,在Well Inspector頁(yè)面的Sample Name欄中填入樣品名稱;在探針列表的Use項(xiàng)下的方框中,打鉤選擇要用的一個(gè)或多個(gè)探針;在Task欄中選擇樣品類領(lǐng):陰性對(duì)照選NTC;未知樣品選Unknown;標(biāo)準(zhǔn)品選Standard。對(duì)于Standard,還要在Quantity欄中輸入DNA拷貝數(shù)。注 意:只有在這里輸入拷貝數(shù)后,軟件才能自動(dòng)生成標(biāo)準(zhǔn)曲線。建議標(biāo)準(zhǔn)品的濃度在5點(diǎn)以上。建議每個(gè)樣品(包括標(biāo)準(zhǔn)品)都按照統(tǒng)計(jì)學(xué)要求作一定數(shù)量的復(fù)管。
6. 參比熒光 如果使用的是ABI公司的定量PCR試劑,如TaqMan Universal PCR Master Mix或者SYBR Green PCR Master Mix等,參比熒光(Passive Reference)選ROX;如果使用的試劑中不含有參比熒光,請(qǐng)選None。完成后點(diǎn)擊右上角的X按鈕,關(guān)閉Well Inspector窗口。
7. 循環(huán)參數(shù) 切換到Instrument頁(yè)面,設(shè)定及修改PCR熱循環(huán)程序:在ABI公司默認(rèn)的程序中,50 C°C 2 C 15°min是UNG酶起作用的步驟,UNG酶可以預(yù)防其他PCR擴(kuò)增的產(chǎn)物(其中以U代替T)對(duì)定量PCR的污染;95 C 1°10 min是定量PCR的循環(huán)步驟。7000默認(rèn)在最后一步,也就是60°min的作用是激活金牌Taq酶,同時(shí)滅活UNG酶;40個(gè)循環(huán)的95 C 1°sec和60 min復(fù)性和延伸時(shí)收集熒光信號(hào)。如果使用ABI公司的定量PCR試劑,上述參數(shù)不需要調(diào)整,直接運(yùn)行PCR循環(huán)就可以了。在使用其他廠家試劑的情況下,如果其中沒有UNG酶,請(qǐng)刪除50°C 2 min步驟;如果使用的不是金牌Taq酶而是其他普通的Taq酶,請(qǐng)刪除95°C 10 min步驟。
8. 循環(huán)參數(shù)的修改方法 刪除:按住Shift鍵并在相應(yīng)的Stage或Step中點(diǎn)擊,該步驟被選中變黑,按Del鍵即可刪該步驟或循環(huán)。插入:在需要插入?yún)?shù)的位置點(diǎn)擊,出現(xiàn)粗黑豎線后,分別點(diǎn)擊Add Hold、Add Cycle或Add Step按鈕添加保溫、循環(huán)或循環(huán)中的一個(gè)步驟。修改溫度和時(shí)間:拖動(dòng)鼠標(biāo),選中需要修改的溫度或時(shí)間數(shù)字,輸入新的數(shù)值即可。
9. 其他設(shè)置 反應(yīng)體積:定量PCR的標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)體積是50 μL;如果想修改的話,建議大于25 μL。融解曲線試驗(yàn):在Dissociation Protocol選項(xiàng)左邊的方框中打鉤,儀器即在定量PCR循環(huán)完成后繼續(xù)做融解曲線試驗(yàn)。如果是采用SYBR Green I染料方法進(jìn)行定量研究,建議進(jìn)行融解曲線試驗(yàn),以判定PCR反應(yīng)特異與否。單峰表示單一的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,多峰表示PCR擴(kuò)增有雜帶。注 意:只有SYBR Green I染料方法才需要進(jìn)行融解曲線試驗(yàn),TaqMan探針和MGB探針法都不需要。9600 Emulation:選中此項(xiàng),即可使7000的升降溫速度減慢,與9600和7700一樣,從而可以直接使用在9600、7700型PCR儀上優(yōu)化好的循環(huán)條件,而不需任何修改。
10. 啟動(dòng)擴(kuò)增 點(diǎn)Save按鈕保存文件設(shè)置。確認(rèn)96孔板或全部樣品管在主機(jī)內(nèi)放置妥當(dāng)后,點(diǎn)擊Start按鈕,開始PCR循環(huán)。屏幕上動(dòng)態(tài)顯示PCR進(jìn)程和剩余時(shí)間。
11. 監(jiān)控進(jìn)程 切換到Results頁(yè)面的Amp Plot子頁(yè)面,可以實(shí)時(shí)顯示PCR曲線隨著循環(huán)增加而逐步增長(zhǎng)的實(shí)際情況。如果Detector選FAM或VIC,只顯示對(duì)應(yīng)探針的變化情況;如果選All,則同時(shí)顯示所有探針的反應(yīng)進(jìn)程。
12. 保存結(jié)果 程序結(jié)束后,點(diǎn)Disconnect按鈕,然后File → Save保存實(shí)驗(yàn)結(jié)果??梢员4鏋?sds格式,也可以保存為.sdt格式,作為以后同類實(shí)驗(yàn)的模板,節(jié)省軟件設(shè)置時(shí)間。
三. 實(shí)時(shí)定量的數(shù)據(jù)分析
1. 數(shù)據(jù)分析 切換到Result頁(yè)面,進(jìn)入擴(kuò)增曲線(Amplification Plot)子頁(yè)面,查看軟件已經(jīng)自動(dòng)分析好的實(shí)驗(yàn)結(jié)果。注 意:此時(shí)的數(shù)據(jù)是軟件根據(jù)默認(rèn)值(基線起點(diǎn)為3,終點(diǎn)為15)得到的初步結(jié)果,還需要根據(jù)本次實(shí)驗(yàn)的具體情況,精細(xì)調(diào)節(jié)Baseline(基線)的起止點(diǎn)后,重新分析,以得到更精確的數(shù)據(jù)。
2. 基線的起點(diǎn)和終點(diǎn)確定原則 基線(Baseline)是指PCR開始時(shí)信號(hào)很低、接近背景且比較平穩(wěn)的那個(gè)階段。起點(diǎn)要避開開始幾個(gè)循環(huán)由于高溫導(dǎo)致的信號(hào)增高,設(shè)在信號(hào)已經(jīng)降到背景高度且能維持平穩(wěn)的地方,一般在3到6個(gè)循環(huán)之間;終點(diǎn)要避免覆蓋信號(hào)已經(jīng)開始有明顯增長(zhǎng)的地方,一般在本組數(shù)據(jù)中最小的CT值前再3個(gè)循環(huán)處。另外,起點(diǎn)與終點(diǎn)之間最好能間隔8個(gè)循環(huán)以上,以滿足統(tǒng)計(jì)基線標(biāo)準(zhǔn)偏差的數(shù)學(xué)要求。調(diào)整好起止點(diǎn)以后,再點(diǎn)擊Analyze按鈕,軟件即自動(dòng)計(jì)算新的閾值和CT值,并更新實(shí)驗(yàn)報(bào)告。注 意:此時(shí)擴(kuò)增曲線頁(yè)面上顯示的閾值數(shù)字并不更新,但是這不影響后臺(tái)數(shù)據(jù)運(yùn)算的準(zhǔn)確。
3. 線性圖譜 在默認(rèn)的設(shè)置中,PCR擴(kuò)增曲線圖譜的縱坐標(biāo)代表經(jīng)過ROX和空白校正后的相對(duì)熒光信號(hào)強(qiáng)度,橫坐標(biāo)代表PCR循環(huán)次數(shù)(從1到40);縱坐標(biāo)以對(duì)數(shù)表示,橫坐標(biāo)以線性表示。如果要看*線性的S形圖譜,請(qǐng)雙擊縱坐標(biāo)軸線,打開坐標(biāo)設(shè)置窗口,將縱坐標(biāo)改成線性形式。
4. 原始數(shù)據(jù) 切換到Component子頁(yè)面,察看原始數(shù)據(jù)。正常的FAM信號(hào)強(qiáng)度,基線時(shí)約為5000點(diǎn),擴(kuò)增完成達(dá)到約28000點(diǎn),中間呈S形增長(zhǎng);TAMRA和ROX的信號(hào)開始時(shí)都比FAM的基線要稍低一點(diǎn),TAMRA信號(hào)到指數(shù)增長(zhǎng)階段會(huì)降低,而ROX信號(hào)是水平穩(wěn)定的,不隨PCR進(jìn)程而改變,因?yàn)镽OX是以固定濃度加入到PCR試劑中的,它本身并不參與PCR擴(kuò)增。
5. 原始數(shù)據(jù) 切換到Spectra子頁(yè)面,也可以察看原始數(shù)據(jù)。Spectra與Component這兩個(gè)頁(yè)面的區(qū)別是:Component顯示的是信號(hào)強(qiáng)度隨時(shí)間(即PCR循環(huán)次數(shù))的變化,是縱向的;而Spectra顯示的是每個(gè)PCR循環(huán)點(diǎn)上信號(hào)強(qiáng)度在不同波長(zhǎng)上的分布,也就是在4個(gè)濾色片上的分布,是橫向的。
6. 標(biāo)準(zhǔn)曲線 切換到Standard Curve子頁(yè)面,察看標(biāo)準(zhǔn)曲線。注 意:只有在Set up時(shí)輸入標(biāo)準(zhǔn)品的拷貝數(shù)后,軟件才能自動(dòng)生成標(biāo)準(zhǔn)曲線。
7. 實(shí)驗(yàn)報(bào)告 切換到Report子頁(yè)面,察看實(shí)驗(yàn)報(bào)告。確認(rèn)無(wú)誤后,保存結(jié)果。也可以從File菜單中選擇Export,再選擇數(shù)據(jù)類型,輸出各種類型的數(shù)據(jù),包括CT值、相對(duì)信號(hào)強(qiáng)度、原始數(shù)據(jù)、融解曲線數(shù)據(jù)和實(shí)驗(yàn)結(jié)果等。輸出的數(shù)據(jù)可以用Excel打開,并可在Excel中重新生成擴(kuò)增曲線、標(biāo)準(zhǔn)曲線等圖譜。
四. 終點(diǎn)讀板的軟件運(yùn)行
各種等位基因鑒定實(shí)驗(yàn),包括SNP檢測(cè)、基因突變檢測(cè)等,都包括兩個(gè)階段:1、PCR擴(kuò)增;2、擴(kuò)增后的熒光信號(hào)讀取(Post-read)和數(shù)據(jù)處理。第一步既可以在9700、9600等普通的PCR儀上進(jìn)行,也可以在7000、7900等定量PCR儀上進(jìn)行;第二步必須在定量PCR儀上進(jìn)行。以下只敘述第二步Post-Read和數(shù)據(jù)處理的操作方法。如果第一步也在定量PCR儀上進(jìn)行,請(qǐng)按第三節(jié)實(shí)時(shí)定量的實(shí)驗(yàn)方法設(shè)置和運(yùn)行軟件;待PCR完成、數(shù)據(jù)保存好后,再將同一塊板放在7000上,按以下步驟操作。
1. 新建文件 菜單File → New,Assay選擇Allelic Discrimination (終點(diǎn)讀板模式,用于SNP分析等),新建一個(gè)空白96孔板文件。
2. 探針設(shè)置 雙擊任意一個(gè)孔,打開Well Inspector窗口。該窗口也可以從菜單View → Well Inspector打開。
3. 使用軟件,或者M(jìn)arker沒有設(shè)置好,先點(diǎn)擊Add Detector按鈕,打開Detector Manager窗口。該窗口也可以從菜單Tools → Detector Manager打開。如果Detector列表中沒有合適的探針,F(xiàn)ile → New,新建探針,設(shè)定探針的名稱(建議使用等位基因的名稱,如Allele 1、Allele 2等)、報(bào)告基團(tuán)(FAM或者VIC)、淬滅基團(tuán)(TaqMan探針選TAMRA;MGB探針選None)、顏色(任意)等。設(shè)置完成后點(diǎn)擊OK,該探針即出現(xiàn)在探針列表中。
4. 位點(diǎn)設(shè)置 Detector設(shè)置好后,點(diǎn)擊Add Marker按鈕,打開Marker Manager窗口。該窗口也可以從菜單Tools → Marker Manager打開。如果在Marker列表中找不到合適的探針,點(diǎn)Create Marker,取名(建議使用位點(diǎn)的名稱,如D2S1356等),OK,新位點(diǎn)的名字即出現(xiàn)在左邊的位點(diǎn)列表中,選中位點(diǎn),在右邊的探針列表中打鉤選擇與該位點(diǎn)配套的探針,一般FAM、VIC各一個(gè)組成一套。
5. 選擇位點(diǎn) Marker設(shè)置完成后,在左邊的位點(diǎn)列表中選中該Marker,點(diǎn)擊Copy to Plate Document按鈕,該Marker的信息即分成3行出現(xiàn)在Well Inspector窗口中。重復(fù)選好全部所需Marker,再點(diǎn)擊Done關(guān)閉Marker Manager窗口。注 意:定量PCR實(shí)驗(yàn)只要求設(shè)置探針(Detector)即可,而SNP實(shí)驗(yàn)既要設(shè)置探針(Detector),還要設(shè)置位點(diǎn)(Marker)。如果沒有設(shè)置Marker,軟件將不能進(jìn)行基因分型。
6. 填樣品表 在96孔表中選定有同類樣品的一個(gè)或多個(gè)孔,在Well Inspector頁(yè)面的Marker列表的Use項(xiàng)下的方框中打鉤,選擇要用的Marker,然后在探針的Task欄選擇樣品類型:陰性對(duì)照選NTC;未知樣品選Unknown。沒有Std。
7. 參比熒光 如果用的是ABI公司的PCR試劑,如TaqMan Universal PCR Master Mix with or without UNG,參比熒光(Passive Reference)選ROX;如果所用試劑中不含ROX參比熒光,請(qǐng)選None。
點(diǎn)擊右上角的X按鈕關(guān)閉Well Inspector窗口。
8. 循環(huán)參數(shù) 切換到Instrument頁(yè)面。PCR熱循環(huán)程序只有60°C一個(gè)步驟,不需要修改。設(shè)置反應(yīng)體積。SNP的標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)體積是50 μL。點(diǎn)Save按鈕保存文件設(shè)置。
9. 終點(diǎn)讀板 確認(rèn)96孔板或全部樣品管在主機(jī)內(nèi)放置妥當(dāng)后,點(diǎn)擊Post-read按鈕,開始讀取數(shù)據(jù),大約10秒完成。
10. 保存結(jié)果 程序結(jié)束后點(diǎn)Disconnect按鈕,然后File → Save保存實(shí)驗(yàn)結(jié)果。
五. 終點(diǎn)讀板的數(shù)據(jù)分析
1. 數(shù)據(jù)分析 切換到Results頁(yè)面,Allelic discrimination子頁(yè)面,在Marker下拉菜單中選擇要查看其數(shù)據(jù)的Marker,在下面96孔板界面中按Excel方式選擇需要查看的樣品孔,軟件即在中間的圖譜上顯示信號(hào)的分布情況。選擇不同的Marker,顯示不同的信號(hào)。可以點(diǎn)擊放大或縮小工具調(diào)整圖譜的大小。
2. 信號(hào)分布 正常的信號(hào)應(yīng)該分為4組,靠近原點(diǎn)處為NTC;靠近X軸的是VIC信號(hào),是純合子,其正常信號(hào)強(qiáng)度范圍在2-8之間;靠近Y軸的是FAM信號(hào),是另一種純合子,其正常信號(hào)強(qiáng)度范圍在4-16之間;靠近對(duì)角線位置的樣品中既有FAM信號(hào)也有VIC信號(hào),是雜合子,強(qiáng)度為FAM和VIC各自的一半左右。
3. 基因分型 點(diǎn)擊套索工具,然后通過鼠標(biāo)圈定NTC信號(hào),在Call下拉菜單中選NTC,這些數(shù)據(jù)點(diǎn)即被分型為NTC并顯示相應(yīng)的顏色和圖標(biāo);同樣分型FAM純合子、VIC純合子和雜合子。
4. 保存結(jié)果 切換到Report頁(yè)面看實(shí)驗(yàn)報(bào)告。確認(rèn)無(wú)誤后,保存分析結(jié)果。也可以從File菜單中選擇Export,再選擇數(shù)據(jù)類型,輸出各種類型的數(shù)據(jù)。
六. 日常維護(hù)
1. 熒光污染的檢查與處理 新建一個(gè)空的96孔板,菜單Instrument → Calibrate打開ROI Inspector窗口,將Exposure Time調(diào)到4096,選定Filter B,點(diǎn)擊Snapshot按鈕(不要?jiǎng)酉旅鎯蓚€(gè)按鈕,以免ROI設(shè)置出錯(cuò)),此時(shí)可以看到排列整齊的96孔圖像。如果觀察到特別明亮的光斑,則表明該孔存在熒光污染。將光標(biāo)移動(dòng)到單個(gè)孔的上方可在右側(cè)欄中的Pixel Intensity處讀出該孔的熒光信號(hào)值,超過500以上的需要清洗。清洗時(shí)盡量使用較細(xì)且無(wú)硬物突出的干棉簽擦拭;如果未能去除,可用去離子水清洗;如污垢頑固,可使用90%乙醇清洗,但要等乙醇*揮發(fā)干凈后方可蓋上熱蓋,以免有機(jī)溶劑損傷熱蓋上的透鏡組。
2. 檢測(cè)器光源的更換流程 關(guān)機(jī)冷卻約15分鐘后,打開儀器頂部蓋板,擰松燈泡保護(hù)罩的螺釘,取下保護(hù)罩,將燈泡拆下,更換新的燈泡并插好連線。注 意:備用的新燈泡必須保存在干燥環(huán)境中。

 

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